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化学成分分析论文范文1
含蛋白质(65%～70%)；多种维生素（VA、VB1、VB2、VB3、VB6、VB12、VC、VE、VK1、叶酸、β-胡萝卜素等）；还含有丰富的矿物质和微量元素（Ca、Fe、K、Mg、P、Zn、Cu和Se等）、叶绿素、叶黄素、类胰岛素、γ-亚麻酸等不饱和脂肪酸，以及藻蓝蛋白、免疫多糖、肌醇、甘露、葡萄糖、核酸、半乳糖、褐藻胶、藻多糖、活性小肽和酶等特殊生物活性物质。
2药理作用
2.1抗辐射作用螺旋藻中的螺旋藻多糖属多价醇，能使低浓度的修复酶的空间构象保持稳定，从而保护酶的活性。藻蓝蛋白具有显著的抗辐射、抗突变的效应。螺旋藻的抗辐射作用还基于螺旋藻多糖存在一套较完整的DNA修复系统，能明显提高机体核酸内切酶的活性和加强受损细胞的DNA修复作用，能保护骨髓细胞免受辐射损伤。
2.2抑制肿瘤细胞生长与复制螺旋藻中的螺旋藻多糖、藻蓝蛋白及有机硒等，通过增强机体免疫和抗氧化能力，从而加强机体自身杀伤肿瘤细胞的能力。
2.3抗病毒作用螺旋藻多糖具有抗HIV-1（人体免疫缺陷病毒）、HSV-1（单纯性疱疹病毒）作用。能抑制麻疹病毒、流行性腮腺炎病毒、流行性感冒病毒、HIV-1的复制。
2.4抗菌作用螺旋藻对革兰氏阳性菌有抑菌作用，对革兰氏阴性菌无抑制作用。
2.5对胃的保护作用螺旋藻因其碱性能提高胃内的PH值，使幽门螺旋杆菌丧失了生存环境，最终死亡。同时，其所含的丰富蛋白质、叶绿素、β-胡萝卜素，对消化道上皮组织修复再生和发挥正常功能有良好的作用。
2.6帮助建造正常的乳酸杆菌群实验证明，食用螺旋藻能使体内的乳酸杆菌增多，并使机体从饮食中吸收维生素B1和其他维生素的效率提高。
2.7对免疫系统的作用螺旋藻中所含的螺旋藻多糖、藻蓝蛋白、β-胡萝卜素、维生素E以及有机硒、超氧化歧化酶（SOD）等抗氧化微营养素具有全面调节机体免疫功能；可增强骨髓细胞的增殖活力，有利于巨噬细胞、T细胞和B细胞等免疫效应细胞的形成；明显提高机体核酸内切酶的活性，加强机体DNA的修复合成作用，从而调节机体的非特异性免疫、体液免疫和细胞免疫功能。
2.8抗过敏研究表明，螺旋藻能降低过敏性休克大鼠的死亡率和显著降低血中组胺水平，抑制抗DHPIgE引起的被动皮肤过敏反应和腹膜肥大细胞释放组胺。
2.9对心脑血管的作用螺旋藻所含脂肪均为不饱和脂肪酸，不含胆固醇。同时富含叶绿素，以及丝氨酸、钾盐、维生素B6等，能帮助人体合成胆碱，降低血压，防止和减轻动脉硬化，螺旋藻中的γ－亚麻酸是人体前列腺素即荷尔蒙的前辈，具有降低血脂，保持血管弹性，降低血液粘稠度，促进血液循环，达到防治心脑血管疾病、降低中风发病率的效果。
2.10提高铁的生物有效性和调理贫血症螺旋藻中含有较丰富的铁质、维生素B12、叶绿素和维生素C。
2.11减轻汞及药物对肾的毒性科学家研究证实：螺旋藻减轻了实验室老鼠汞和药物的肾中毒。科学家测定了两个指标：肾的毒性血液尿氮（BUM）和血清肌酸。当老鼠饮食中添加30%的螺旋藻后，BUN和血清肌酸水平大幅下降。这一研究表明：螺旋藻对人类免受重金属及药物对肾脏的毒害有益处。
2.12抗氧化、抗衰老、抗疲劳有研究表明，螺旋藻多糖能降低心、肝、脑组织丙二醛（MDA）含量，增加全血、肝脏的谷胱甘肽过氧化物酶活性及还原型谷胱甘肽的含量，提高红细胞和脑组织SOD（超氧化物歧化酶）的活性。螺旋藻还能增强血清乳酸脱氢酶的活性，降低运动后血乳酸值，延长负重游泳时间。
3毒性反应
螺旋藻营养胶囊灌胃给药8g/kg×7d，未发现小鼠死亡，其呼吸均匀，大小便及分泌情况正常，此剂量为成人推荐剂量的333倍。大鼠在慢性毒性实验期间其形态、体重、病理切片检查均正常，生长发育良好。急性毒性实验结果表明给小白鼠最大耐受量的药液后未出现任何毒性反应。
4临床应用
增强机体免疫力，具有防癌、抗癌、抗辐射作用；胃及十二指肠溃疡；肠易激综合征；便秘和痔疮；风湿病；高血脂；高血压；心脏病；糖尿病；贫血症；肝病；肾脏病；白内障等。
5近况和未来
螺旋藻由于其高安全性、高营养性，被联合国粮农组织（FAO）推荐为“21世纪最理想的食品”，早已在世界各地得到普遍应用。如今，螺旋藻除了营养保健功效外，其特殊的药理作用正备受各国医学界的关注，随着研究的逐步展开，其潜在的医用价值将被充分挖掘，也必将有其广阔的前景。
【论文摘要】螺旋藻是现存地球上最古老的药用植物之一，含有多种具有特殊功能的活性物质，近年来的研究证明螺旋藻具有广泛而高效的药用价值，可作为治疗多种疾病的辅助药物。本文主要通过螺旋藻的化学成分、药理作用、毒性反应、临床应用等来进行论述。
化学成分分析论文范文2
1.1仪器岛津GCMS-QP-5000型气质联用仪。
1.2试剂乙醚、无水Na2SO4（均为AR）。
1.3药材金针菇样品由广东省蚕桑研究所提供，经该所所员刘学铭研究鉴定，为白蘑科菌类植物金针菇Flammulinavelutipes。
2方法
2.1供试品溶液的制备药材切成约1.5～2cm的段，取约80g，按照《中国药典》附录XD挥发油测定法——甲法［4］操作，加蒸馏水800ml，加热4h，收取挥发油提取器中油层和部分芳香水层，乙醚萃取，萃取液用无水Na2SO4脱水后备用。
2.2GC-MS分析
2.2.1色谱条件GC：DB-1石英毛细管色谱柱（30m×0.25mm），样口温度250℃；接口温度230℃；载气为氦气；流速1.3ml·min-1；柱压80kPa；分流比10∶1；进样量为1.0μl。升温程序：初始柱温60℃，保持1min，以10℃·min-1的速率升到280℃，保持5min。
2.2.2质谱条件EI源（70ev），350V，双灯丝；质量范围m/z40～450全程扫描，扫描间歇1.0s。检测电子倍增器电压1.4kV。检索谱库名称NIST。
3结果
依法操作，得到挥发性成分的总离子流图。扣除乙醚溶剂本底后分离得到30个组分，对相对含量较高的组分进行质谱分析，通过计算机检索并与标准谱图对照，鉴定出其中的6个组分。以扣除溶剂峰的色谱图的全部峰面积作为100%，用归一化法确定了各组分在挥发油中的相对含量。分析结果见表1，总离子流图见图1。表1金针菇挥发性成分中的化学成分及相对百分含量（略）
4讨论
从GC-MS总离子流图及GC-MS检测结果可以看出，金针菇挥发性成分以亚麻酸为主，其相对含量达到32.74%。亚麻酸具有增长智力、延缓衰老、降低血压和胆固醇、抗菌、抗炎、抗肿瘤等活性［5～7］，是降血压、降血脂药物和保健品的重要原料之一，应进一步研究，加以利用。
本研究首次从金针菇挥发性成分中鉴定出亚麻酸（32.74%）、软脂酸（6.41%）、邻苯二甲酸异丁酯（5.23%）、软脂酸乙酯（4.96%）、邻苯二甲酸丁酯（3.07%）、苯乙醛（1.95%）等成分，占其挥发性成分相对含量的54.36%，但还有24个组分尚未能鉴定出其结构，可能是由于金针菇挥发性成分属首次研究，其中一些成分尚未收入NIST检索谱库，有待于今后深入研究。
【参考文献】
［1］国家中医药管理局《中华本草》编委会.中华本草，第1册［M］.上海：上海科学技术出版社，1999：570.
［2］魏华，谢俊杰，吴凌伟,等.金针菇营养保健作用［J］.天然产物研究与开发，1997,9(2)：92.
［3］黄毅.食用菌栽培［M］.北京：高等教育出版社,1993：132，258.
［4］国家药典委员会.中国药典，Ⅰ部［S］.北京：化学工业出版社，2005：57.
［5］王威,闰嘉英,王永奇.紫苏油药理活性研究进展［J］.时珍国医国药，2000,11(3)：283.
［6］董杰明，吴瑞华，袁昌鲁，等.γ-亚麻酸的保健作用［J］.卫生研究，2003,32(3)：299.
［7］Fukushima,OhhashiM,OhnoT,etc.Effectsofdietsenrichedinn-6orn-3fattyacidsoncholesterolmetabolismolderratschronicallyfedacholesterol-enricheddiet［J］.Lipids,2001,36(3)：261.
化学成分分析论文范文3
X－4型显微熔点测定仪（温度未校正）；BrukerEQUINO55型红外光谱仪；GCT型质谱仪；BrukerAM-500核磁共振仪；Agilent1100液相色谱-质谱联用仪；柱色谱用硅胶、薄层用硅胶G、薄层用硅胶GF254均为青岛海洋化工厂产品；柱色谱用聚酰胺、聚酰胺薄膜为浙江省台州市路桥四甲生化塑料厂产品，葡聚糖凝胶LH-20为瑞典Pharmacia公司产品。实验所用试剂均为分析纯。
欧亚旋覆花采自山西运城地区，经河北医科大学药学院生药教研室聂凤禔教授鉴定为菊科植物欧亚旋覆花InulaBritannicaL.。
2方法与结果
2.1提取与分离取10kg欧亚旋覆花地上部分，粉碎后用95%乙醇室温提取3次，提取液减压浓缩至膏状物762g，将膏状物分次以1g:2ml的比例悬浮于水中,依次用石油醚、氯仿、醋酸乙酯和正丁醇萃取，萃取液减压浓缩得干膏。取正丁醇萃取物100g，经AB-8大孔吸附树脂富集,聚酰胺柱层析,硅胶柱层析，氯仿-甲醇系统梯度洗脱,葡聚糖凝胶LH-20（甲醇）纯化得到化合物Ⅰ(8mg)、Ⅱ(80mg)、Ⅲ(12mg)、Ⅳ(30mg)、Ⅴ(7mg)、Ⅵ(8mg)、Ⅶ(100g)、Ⅷ(7mg)。
2.2结构鉴定
2.2.1化合物Ⅰ黄绿色粉末，m.p.173～174℃，盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阳性。用TLC（三种不同的展开系统）和HPLC检测，与芦丁对照品的Rf值和tR值相同，且与芦丁对照品的混合熔点不下降，确认为芦丁（rutin）。
2.2.2化合物Ⅱ黄色针晶（甲醇），m.p.283～285℃，对改良碘化铋钾试剂呈阳性反应。EI-MS：m/z：335。IR（KBr）cm-1：ν-OCH32947cm-1，νC=N1633cm-1，νAr-OCH31276、1331cm-1，ν-O-CH2-O-1387、1359、1232cm-1。1HNMR（400MHz,DMSO-d6,TMS,δppm）：9.87（1H,s,H-8），8.91（1H,s,H-13），8.19（1H,d,J=9.16Hz,H-11），7.98（1H,d,J=9.00Hz,H-12），7.78（1H,s,H-1），7.08（1H,s,H-4），6.16（2H,s,-O-CH2-O-），4.91（2H,t,H-6），4.06（3H,s,-OCH3），4.08（3H,s,-OCH3），3.19（2H,t,H-5）。13CNMR（100MHz,DMSOδ）：150.85（C-3），150.29（C-9），148.15（C-2），145.92（C-8），144.10（C-10），137.95（C-13a），133.41（C-12a），131.15（C-4a），127.21（C-13），123.96（C-12），121.86（C-1a），120.90（C-11），120.64（C-8a），108.89（C-4），105.87（C-1）,102.54（-O-CH2-O-），62.36（-OCH3），57.49（-OCH3），55.63（C-6），26.77（C-5）。经与文献［1，2］对照，以上数据与小檗碱的波谱数据基本一致，确定化合物Ⅱ为小檗碱。
2.2.3化合物Ⅲ黄色粉末（甲醇），盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阳性。酸水解后薄层层析，与糖的对照品对照，证明糖为葡萄糖。LC/ESI-MS:m/z:493.3［M-H］-，二级质谱m/z:331.3［M-H-162］-。1HNMR（400MHzDMSO-d6,TMS,δppm）：7.72（1H，s，H-2＇），7.55（1H，d，J=8.48，H-6＇），6.94（1H，s，H-8），6.90（1H，d，J=8.38，H-5＇），5.13（1H，d，J=6.38）。经与文献［3～5］对照，确认化合物Ⅲ为万寿菊苷（patulitrin）。
2.2.4化合物Ⅳ黄色粉末（甲醇），m.p.234～236℃。盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阳性。经过酸水解后与糖的对照品进行薄层层析实验，证明为葡萄糖。LC/ESI-MSm/z:463.2［M-H］-。1HNMR（400MHzDMSO-d6,TMS,δppm）：6.18（1H，s，H-6），6.38（1H，s，H-8），6.82（1H，d，J=8.96Hz，H-5＇），7.57（1H，s，H-2＇）,7.55（1H,s,H-6＇），5.44（1H,d,J=6.96,H-1＇＇）。13CNMR（100MHz，DMSOδ）：155.6（C-2），132.8（C-3），176.9（C-4），160.7（C-5），98.1（C-6），163.6（C-7），92.9（C-8），155.8（C-9），103.4（C-10），120.6（C-1＇）114.7（C-2＇），144.3（C-3＇），147.9（C-4＇），115.6（C-5＇），121.1（C-6＇），100.3（C-1＇＇），73.5（C-2＇＇），75.9（C-3＇＇），69.4（C-4＇＇），77.1（C-5＇＇），60.4（C-6＇＇）。以上数据与文献［6～8］对照，确认化合物Ⅲ为异槲皮苷（isoquercitrin）。
2.2.5化合物Ⅴ黄色粉末，m.p.183～185℃,盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阳性。LC/ESI-MS：m/z:447.1［M-H］-，二级质谱m/z：301.2［苷元-H］-。用TLC（3种不同的展开系统）和HPLC检测，与槲皮苷对照品的Rf值和tR值相同，且与槲皮苷对照品的混合熔点不下降，确认化合物V为槲皮苷（quercitrin）。
2.2.6化合物Ⅵ无色针状结晶，m.p.207～209℃,三氯化铁反应墨绿色，与绿原酸已知品对照，用TLC（3种不同的展开系统）和HPLC检测的Rf值和tR值一致，且与绿原酸对照品的混合熔点不下降，确认化合物Ⅵ为绿原酸（chlorogenicacid）。
2.2.7化合物Ⅶ黄色粉末（甲醇），m.p.312～316℃，盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阴性。LC/ESI-MS：m/z：301.2［M-H］-，二级质谱：m/z151.0［A1-1］。用TLC（3种不同的展开系统）和HPLC检测，与槲皮素对照品的Rf值和tR值相同，且与槲皮素对照品的混合熔点不下降，确认化合物Ⅶ为槲皮素（quercetin）。
2.2.8化合物Ⅷ黄色粉末（甲醇），m.p.276278℃，盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阴性。LC/ESI-MS:m/z:284.9［M-H］-。用TLC（3种不同的展开系统）和HPLC检测，与山柰酚对照品的Rf值和tR值相同，确认化合物Ⅷ为山柰酚（kaempferol）。
3讨论
欧亚旋覆花正丁醇萃取物中所含的化合物主要是黄酮苷，大部分是槲皮素苷元，我们在醋酸乙酯部分得到1g槲皮素，己在另文报道。
欧亚旋覆花中除含有黄酮类化合物外，还有酸素化合物和生物碱，为进一步研究欧亚旋覆花奠定了基础。
该部分还有一极性较大的成分没有得到，且通过HPLC观察其含量很高，值得进一步分离研究。
【参考文献】
［1］秦海林，尚玉俊，赵伟，等.核磁共振氢谱法鉴别黄连的研究［J］.中草药,2000,31(1):48.
［2］张起辉，高慧媛，吴立军，等.吴茱萸的化学成分［J］.沈阳药科大学学报,2005,22(1):12.
［3］ParkEJ,KimY,andKimJ.AcylatedflavonolglycosidesfromtheflowerofInulabritannica［J］.JNatProd,2000,63(1):34.
［4］BaiNS,ZhouZh,ZhuNQ,etal.AntioxidativeflavonoidsfromtheflowerofInulaBritannica.JournalofFoodLipids,2005,12:141.
［5］滑艳，汪汉卿.白茎绢蒿黄酮类化合物的研究［J］.中国中药杂志,2006,31(10):820.
［6］叶冠，范明松，黄成钢.芨芨草中的黄酮类化学成分的分离与鉴定［J］.中草药,2006，37(6)：821.
［7］董建勇，贾忠建.赶山鞭中黄酮类化学成分研究［J］.中国药学杂志，2005，40(12)：898.
［8］凌云，鲍燕燕，郭秀芳.蒲公英中两个黄酮甙的分离鉴定［J］.中国中药杂志，1999，24(4)：620.
化学成分分析论文范文4
核磁共振光谱用BrukerAV-300、AV-500型核磁共振光谱仪测定（TMS内标）；红外光谱用ShimadzuIR-435型红外分光光度计测定（KBr压片）；熔点用X4型数字显示显微熔点测定仪（未校正）测定；ESI-MS在Agilent1100LC/MSDSL上测定；LABCONCO(freezedrysystem/LYPHLOCK4.5)冷冻干燥仪。化合物纯度由Agilent-1100高效液相色谱仪检测。柱色谱材料为D101型大孔吸附树脂、聚酰胺（100~200目）、硅胶(200~300目)、RP-C18（YMC;12μm）及SephadexLH-20（AmershamBiosciences），柱色谱试剂均为分析纯，高效液相色谱试剂均为色谱纯。
2方法与结果
2.1提取与分离北柴胡干燥茎叶15kg，粉碎后用80%乙醇冷浸提取2次，合并提取液，减压浓缩至无醇味，得总浸膏。总浸膏用正丁醇萃取，减压浓缩后得正丁醇部浸膏320g，水溶解后上大孔吸附树脂换水洗脱后，分别用不同体积分数的95%乙醇梯度（φ=20%，30%，50%，70%）洗脱，20%乙醇洗脱得流分Ⅰ，30%乙醇洗脱得流分Ⅱ，50%乙醇洗脱得流分Ⅲ，70%乙醇洗脱得流分Ⅳ。流分Ⅰ经硅胶干柱色谱，以氯仿-甲醇-水（体积比为4∶1∶0.5）洗脱得15个组分（Fr.1~Fr.15），其中，Fr.3经SephadexLH-20，甲醇洗脱得化合物1（15mg）；Fr.5经RP-C18反相柱色谱，水-甲醇（1∶1）洗脱得化合物2（12mg）；Fr.7-12经RP-C18反相柱色谱，水-甲醇（9∶1）洗脱得化合物5（6mg）。流分Ⅱ经硅胶干柱色谱，氯仿-甲醇溶剂系统（7∶3）洗脱得化合物4(7mg)。流分Ⅲ经硅胶干柱色谱，石油醚-醋酸乙酯溶剂系统（体积比100∶0，90∶10，80∶20…）梯度洗脱，得20流分，流分10经反相柱色谱，水-甲醇（体积比3∶7）洗脱得化合物3(0.6g)。流分Ⅳ经聚酰胺色谱柱不同体积分数乙醇梯度洗脱，得化合物6(0.5g)和7(3.0g)。
2.2结构鉴定
2.2.1化合物1无色针晶（醋酸乙酯），mp210~212℃，溴甲酚绿显色反应阳性(示存在羧基)，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，1HNMR(300MHz，DMSO-d6)：δ12.46(1H，brs，-COOH)，9.81(1H，brs，ArOH)，7.43(1H，d，J=2.0Hz,H-2)，7.45(1H，dd，J=8.7，2.0Hz，H-6)，6.84(1H，d，J=8.7Hz，H-5)，3.81(3H，s，OCH3)。NOESY谱中，3.81(3H，s，OCH3)与7.43(1H，d，J=2.0Hz,H-2)有NOE效应。经与文献［1］对照，确定化合物1为香草酸。
2.2.2化合物2无色针状结晶（乙醇），mp151~154℃，溴甲酚绿显色反应阳性(示存在羧基)，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，1HNMR(300MHz，DMSO-d6)：δ6.97(1H，d，J=7.9Hz，H-3)，7.54(1H，dd，J=7.9，1.7Hz，H-4)，6.94(1H，t，J=7.9Hz，H-5)，7．80(1H，dd，J=7.9，1.7Hz，H-6)，12.65（1H，s，-OH），15.87（1H，s，-COOH）。13CNMR(125MHz，DMSO-d6)：δ112.9(C-1)，161.1(C-2)，117.0(C-3)，135.6(C-4)，119.1(C-5)，130.2(C-6)，171.8(C-7)。以上氢谱与碳谱数据与文献［2］基本一致，确定化合物2为水杨酸。
2.2.3化合物3无色针晶(甲醇)，mp142~143℃，IRcm-1：3430(-OH)，1660(C=O)，1622(C=C)，1602，1590(-Ar)，1042(CO-)。1HNMR(500MHz，DMSO-d6)：δ7.04(1H，d，J=2.1Hz，H-2)，6.75(1H，d，J=8.2Hz，H-5)，7.00(1H，dd，J=8.2，2.1Hz，H-6)，6.25(1H，d，J=15.9Hz，=C-H)，7.46(1H，d，J=15.9Hz，=C-H)，4.15(2H，q，-CH2)，1.24(3H，t，CH3-)，9.09(1H，s，-OH)，9.54(1H，s，-OH)。ESI-MS(m／z)：208(M+)，180(M+-CH2CH3+H)，163(M+-OCH2CH3)。13CNMR(125MHz，DMSO-d6)：125.5（C-1），114.8（C-2），145.5（C-3），144.9（C-4），115.7（C-5），121.2（C-6），114.0（=C），148.3（=C），166.4（-C=O），59.6（-CH2），14.2（CH3-）。以上氢谱与碳谱数据与文献［3］基本一致，确定化合物3为咖啡酸乙酯。
2.2.4化合物4无色针晶（甲醇），mp204~206℃，溴甲酚绿显色反应阳性(示存在羧基)，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，1HNMR(500MHz，DMSO-d6)：δ7.35（1H，d，J=2.0Hz，H-2），6.79(1H，d，J=8.2Hz，H-5)，7.30(1H，dd，J=8.2，2.0Hz，H-6)，9.26(1H，s，-OH)，9.63(1H，s，-OH)，12.27(1H，s，-COOH)。13CNMR(125MHz，DMSO-d6)：δ121.7(C-1)，116.6(C-2)，144.9(C-3)，150.0(C-4)，115.1(C-5)，121.9(C-6)，167.3(-COOH)。以上氢谱与碳谱数据与文献［4］基本一致，确定化合物4为原儿茶酸。
2.2.5化合物5淡黄色针晶(甲醇)，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，溴甲酚绿显色反应阳性(示存在羧基)。1HNMR(500MHz，DMSO-d6):δ6.67(1H，s，H-3)，6.19(1H，d，H-6)，6.46(1H，d，H-8)。13CNMR(125MHz，DMSO-d6)：δ160.7(C-2)，109.0(C-3)，183.2（C-4），161.4（C-5），98.8（C-6），161.6（C-7），93.99（C-8），157.6（C-9），104.5（C-10），164.6（-COOH）。以上氢谱与碳谱数据与文献［5］基本一致，确定化合物5为柴胡色原酮酸。
2.2.6化合物6淡黄色针晶(甲醇)，mp275~276℃，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，盐酸-镁粉反应阳性，Molish反应阴性。与山萘酚标准品共薄层，Rf值一致。与标准品混合后熔点不下降。1HNMR(500MHz,DMSO-d6):δ12.47,10.75,10.07,9.35(各1H,s,D2O可交换,5-OH,7-OH,3-OH,4′-OH),8.04(2H,d,J=8.7Hz,H-2′,H-6′),6.93(2H,d,J=8.7Hz,H-3′,H-5′),6.44(1H,d,J=2.0Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.0Hz,H-6)。以上氢谱数据与文献［6］基本一致，确定化合物6为山萘酚。
2.2.7化合物7淡黄色针晶(甲醇)，mp185~186℃，三氯化铁-铁氰化钾反应阳性(示有酚羟基存在)，盐酸-镁粉反应及Molish反应阳性，与芦丁标准品共薄层，Rf值一致。高效液相检测与芦丁标准品保留时间相同（液相色谱条件：AgilentEclipseCDB-C18色谱柱，4.6mm×250mm，5μm；柱温：30℃；流动相：20％甲醇；流速：1.0ml/min；检测波长：365nm）。1HNMR(500MHz，DMSO-d6):δ12.59,10.79,9.62,9.14(各1H,s,D2O可交换,5-OH,7-OH,3′-OH,4′-OH),7.55（1H,d,J=2.0Hz,H-2′）,7.53(1H,dd,J=2.0,8.2Hz,H-6′),6.84(1H,d,J=8.1Hz,H-5′),6.38(1H,d,J=2.0Hz,H-8),6.19(1H,d,J=2.0Hz,H-6),5.33(1H,d,J=7.4Hz,GlcH-1),5.06(1H,brs,rhaH-1)。以上氢谱数据与文献［5］基本一致，确定化合物7为芦丁。
3讨论
本实验从北柴胡茎叶中分离鉴定了7个化合物，其中黄酮类3个，分别为柴胡色原酮酸⑤、山萘酚⑥、芦丁⑦；酚酸类4个，分别为香草酸①、水杨酸②、咖啡酸乙酯③、原儿茶酸④。化合物②③④为首次从柴胡属植物中分离得到，这对阐明北柴胡茎叶解热抗炎作用的药效物质基础有一定的意义。
【参考文献】
［1］何明芳,孟正木,沃联群.积雪草化学成分的研究［J］.中国药科大学学报,2000,31（2）:91.
［2］SadtlerResearchLaboratories.SadtlerStandardCarbon13NMRSpectra［Z］.Pennsylvania(USA):SadtlerResearchLaboratories，1989．6216C.
［3］屠鹏飞,吴卫中,郑俊华.太白米的酚酸类成分研究［J］.药学学报,1999,34(1):39.
［4］王素娟,裴月湖.白桦叶化学成分的研究［J］.沈阳药科大学学报,2000,17(4):256.
［5］梁鸿,赵玉英,崔艳君，等.北柴胡中黄酮类化合物的分离鉴定［J］.北京医科大学学报,2000,32(3):223.
［6］中国科学院上海药物研究所植物化学研究室.黄酮体化合物鉴定手册［M］.北京：科学出版社,1981：639.
化学成分分析论文范文5
关键词：科技论文；表格；规范化
1前言
表格是为了直观比较数据、快速浏览项目，进行各种运算的一种书面表达方式。在科技论文中表格的出现频率较高，采用表格来表达实验数据，比使用文字叙述更为直观，也更易比较。而表格的编制与编辑排版质量也直接影响着读者对论文内容的理解。因此，表格在科技论文中具有不可或缺的重要作用。
通常而言，科技论文中的表格主要分为挂线表、无线表、有线表（卡线表）3类，最常用到的是有线表，而国际上通用的是三线表。表格主要由表题、横表头、纵表头、表身、表注 5部分组成。表格的使用看似简单，然而一些作者由于对其相关概念与注意事项理解不清，可能导致误用、错用表格。如适宜用图片时却采用表格、表格设计过于复杂、表中项目安排不合理等，这些都可能直接降低论文的可读性，甚至影响到论文的学术价值。
本文就科技论文中表格使用所存在的一些常见问题进行分析，并对表格使用的规范化提出相关建议。
2表格使用存在的问题分析
在科技论文中，表格使用方面所存在的问题通常有以下几方面：
2.1表题文字与表身内容对应不当
表1所示为不同熔体超温处理温度下的合金枝干与枝间化学成分。由表1可以看出，表题说的是合金枝干与枝间的化学成分，但在表中，如1500℃时Ni的化学成分分别为66.001 与64.282 ，但仅从表中无从得知哪个值是枝干、哪个值是枝间。在表1中，表题文字与表身内容存在着明显的对应不当、含混不清，进而影响了对于文章的理解。因此，将表1稍作改动，就能使表题文字与表身内容相互对应、一目了然。改动后的表如表2所示，在表题文字中“枝干”与“枝间”加了一个斜杠，而表身中不同温度下每个元素的两个含量值之间也相应加了斜杠。如此改动，即可便于理解斜杠之前数值代表“枝干”的化学成分，斜杠之后代表“枝间”的化学成分，从而较好的体现了表题文字与表身内容的对应关系，也改善了文章的可读性。
2.2 缺少横表头
横表头是表格中横行项目的名称，一般格式为：项目名称/单位。表3所示为实验用K4648合金的成分。由表3可以看出，“Cr、W、Mo”等为元素名称，而它们所属的项目名称应为“元素”；wt%与at%分别代表元素的质量分数值和原子分数值，而它们的项目名称应为“含量”。显然，在表3中横表头的说明不够完善，使表格的自明性大为降低。表4为添加横纵表头后K4648合金的化学成分表。由表4可以看出，此表较之于表3的表达更为清楚和完整。
2.3 表格横向数据栏目太多
表5为Cu72Al26.5Nb1.5合金组成相能谱分析结果。由表5可以看出，纵表头的名称为“Matrix”（基体）和“Precipitation”（析出相），而“Precipitation”（析出相）又包括3类：“Dark”（黑色相）、“Short rods”（短棒状相）、“Irregular shape”（不规则相）。横向栏目数据为各个相中“Cu、Al、Nb”的原子分数值。此表中所列数据较多，且排列不当、显得混乱。在这种情况下，如果能将纵表头改成横表头，则将改善表格的自明性。改换后的表如表6所示。从表6中可以清楚的看出，基体与析出相所含各个不同类型相中“Cu、Al、Nb”的原子分数值。
2.4 适宜采用表格的数据却使用图片表示
图1为铸带和铸锭工艺制备的磁体性能示意图。可以看出，在图1中横坐标的物理量为（BH）m磁能积、iHc饱和磁化强度、Br矫顽力，而纵坐标清楚的标出了两种工艺下的磁性能值。在这种情况下，图中的柱状图只是起到比较数据相对大小的作用，并无其它含义。而对于同类型数据的比较，通常而言，表格往往比之于柱状图等图片形式更为直观有效。因此，可将图1作改为表7所示。在表7中，横纵坐标物理量之间如果没有线性关系，也应列于表中。在实际应用中，当表述内容既可用图又可用表来表达时，应按具体情况来合理选择表达形式：当表述内容为具体数值的定量分析时，必须列表而不能做图；当表述内容为定性分析时，就尽量作图而不列表，做成图变化趋势一目了然。
2.5 表中内容过于简单
在科技论文中，如果需要说明的数据内容过于简单，则不需要列表，选择直接用文字表达将会更为清楚明白。表8所示为Al-Ti-C的配料比，所要表达的是这种材料中各种元素的含量，内容较为简单，即可直接在文中使用文字 “Al的含量为68.61%，Ti的含量为68.61%，C的含量为68.61%” 说明即可。诸如此类相对简单的表达问题，如果不加注意，往往在论文写作中也会成为文章的不足之处。
3对于表格使用存在问题的相关建议
通过对于科技论文中表格使用的几类常见问题分析，希望对于科技论文的作者提供帮助，以期有助于提高论文中表格的自明性，进而提升科技论文的整体质量。基于此，提出使用表格的几点相关建议：
（1）表题文字必须准确反映表身内容，二者应相互对应。
（2）三线表格中不能缺少表头中的各项栏目名称。
（3）表格横向数据栏目过多时，可考虑采用纵表头。
（4）只用于标明具体数据的准确数字或数据量较大时应列表说明，不宜作图表示。
（5）尽量使用三线表，表头不要重复表题。
（6）表中内容务必要与正文保持一致（如单位等）。
（7）表格的排版原则是顶天立地，尽可能将表格置于顶端或底部。
参考文献：
[1]汪继祥等.作者编辑手册[M].北京： 科技出版社，2004
[2]谭炳煜等.怎样撰写科学论文[M].沈阳： 辽宁人民出版社，1982
[3]刘祥娥，林琳.科技期刊三线表使用中的常见问题分析[J].中国科技期刊研究，2007，18（5）： 900-902
[4]汪玲，周世慧.医学期刊三线表设计中常见问题例释[J].江汉大学学报（社会科学版），2004，21（4）： 106-109
[5]马奋华，倪东鸿，王小曼等.三线表设计中栏目设置的探讨[J].中国科技期刊研究，2005，16（6）： 929-931
[6]葛赵青，杜秀杰，王焕雪 等. 关于三线表的争鸣[J].中国科技期刊研究，2010，21（2）： 226-229
[7]钱畅. 三线表使用中的几个问题[J].中国科技期刊研究，2003，14（6）： 1-702
[8]刘少华，谢桂英.科技期刊表格的规范化[J].广州大学学报（自然科学版），2003，2（1）： 96-100
[9]金德年.科技期刊的表格[J].编辑学报，1991，3（增刊）： 21～25
[10]杜云祥.科技期刊编排格式的标准化和规范化[J].编辑学报，2000，12（2）：105-108
[11]陈浩元主编.科技书刊标准化十八讲[M].北京： 北京师范大学出版社
[12]宫福满.对“关于科技期刊表格规范的商讨”一文的商榷[J]，中国科技期刊研究，2001，12（5）： 396-397
化学成分分析论文范文6
关键词：姜黄属;化学成分;姜黄素类;挥发油
中图分类号：R284文献标识码：A文章编号：1673-2197（2009）02-0124-04
姜黄属(Curcuma)植物隶属被子植物门、单子叶植物纲、姜科。它包括姜黄、郁金和莪术。姜黄为植物姜黄(Curcuma longa L.) 的干燥根茎;郁金为姜科植物温郁金(Curcuma wenyujin)、姜黄(Curcuma longaL.)、广西莪术(Curcuma kwangsiensis)或蓬莪术(Curcuma phaeocaulis) 的干燥块根,莪术为姜科植物蓬莪术(Curcuma phaeocaulis)、广西莪术(Curcuma kwangsiensis) 或温郁金(Curcuma wenyuin)的干燥根茎。中医认为姜黄属植物具有解郁、行气、止痛、化瘀、利胆、清心、消积、通经等功效, 近来研究发现它们有抗癌、抗早孕、抗凝血、抗氧化和保肝等活性［1］。现综述如下。
1 化学成分
姜黄属植物的根茎和块根中主要化合物成分是姜黄素类和挥发油，还有树脂类、糖类、甾醇类、多肽类、脂肪酸、生物碱及微量元素等。
1.1 姜黄素类(curcuminoids)
姜黄素类为二苯基庚烃类成分(diarylheptanoids)，也包含个别戊烃类化合物,根据苯环上有无羟基可分为酚性和非酚性两类,当以庚烷为母体,在1，7 位有芳基取代(见图1 和表1) ［2-3］,现已分离并鉴定出20多个姜黄类化合物［1］（见表2）,其中姜黄素(curcumin),去甲氧基姜黄素(demethoxycurcumin) 和双去甲氧基姜黄素(bis-demethoxycurcumin) 最为常见,他们的结构式（见图2）。在国内,姜黄属植物已确证的共有12 种，姜黄素类化合物主要分布在姜黄属植物的10个种中［4］,其中我国有9个种。在这些植物中印尼莪术(C.xanthorrhiza) 及姜黄(C.longa)含姜黄素类化合物品种最多。
1.2 挥发油类
挥发油成分主要为单萜类及倍半萜类化合物及其衍生物, 即萜类是挥发油的主要活性成分。到目前为止,己分离并鉴定出得到约120多个倍半萜类化合物,根据结构骨架可以分为a.吉马烷型, b.愈创木烷型, c.蒈烷型, d.桉烷型, e.没药烷型, f.榄香烷型, g.苍耳烷型, h.杜松烷型, I.螺内酯型, j.蛇麻烷型, k.拉松烷型, l.倍半萜二聚体,m.其它,见表3和图3［5-13］。
2 分析方法
2.1 挥发油类成分的分析
挥发油成分的分析多采用GC和GC-MS，周欣等［14］ 研究不同产地姜科姜黄属植物挥发油的化学成分，就是用气相色谱-质谱联用仪对其进行分离测定。但中药挥发油中存在大量的同分异构体，这时常用气红联用技术。
2.2 姜黄素类成分的分析
据文献报道最初常用TLC、比色法和柱层析分离法来测定姜黄素的含量及总姜黄素含量。随分析检测手段的不断发展,采用TLC扫描法测定了3种姜黄素的含量,戚爱棣等［15］采用薄层扫描法测定姜黄、郁金、莪术中姜黄素的含量,结果表明薄层分离后,姜黄素色斑稳定,平均回收率为98.12%。本法准确、快速、简便。
现在姜黄素类成分的测定多采用HPLC,雷云霞等［16］ 建立高效液相色谱法测定郁金饮片中姜黄素的含量,结果表明该方法简单可行,结果准确,重复性好,可用于郁金饮片中姜黄素的含量测定。
近来也采用HPCE测定姜黄素化合物,薛玲等［17］ 利用毛细管区带电泳法对郁金中所含黄素类化合物进行分离研究,发现该方法快速、简便，消耗试剂少,不污染环境。
3 提取方法
3.1 挥发油类成分的提取方法
挥发油类成分易溶于有机溶剂,难溶于水,传统提取方法为水蒸汽蒸馏法。且发展到有超声波辅助的水蒸汽蒸馏法，刘洪玲［18］用气相色谱-质谱联用技术对郁金挥发油化学成分进行分析鉴定，采用超声波-水蒸气回流法从郁金中提取挥发油。结果共分离出47个化学组分,鉴定了37个化学成分,占挥发油相对含量的93.61% 。该实验方法简便可靠,重现性好。现在还用超临界CO2流体萃取挥发油及对其成分分析研究。
3.2 姜黄素类化合物的提取方法
姜黄素易溶于甲醇、乙醇、丙酮、碱液等溶剂中,不溶于水,微溶于苯和乙醚。它对热稳定，但是在光照下和碱液中是不稳定的。目前,从姜黄属植物中提取姜黄素类化合物的方法主要有：①水提法 ；② 酸碱法；③ 有机溶剂提取法， 宿树兰等［19］在鉴别姜黄属常用药材的方法中，对姜黄属四种常用药材姜黄、黄丝郁金、绿丝郁金、莪术采用80乙醇、无水乙醇、丙酮、乙醚分别进行提取,结果是4种药材的4种溶剂提取物的红外吸收峰明显不同,可作为鉴别药材和质量控制的手段之一；④ 超临界CO2流体萃取，杨承鸿［20］ 用超临界CO2法同时提取姜黄油与姜黄素,在所得的姜黄素类化合物中总姜黄素含量约为90%。
4 药理活性和临床应用
关于姜黄属植物药理活性近年来国内外有不少报道。如姜黄素类物质具有改善肠胃、心脏血管、神经系统保肝护肝等多种功能;促进脂肪的新陈代谢和广谱的抗炎、抗氧化、抗癌防癌、抗菌等系列药理活性［4］。Jagetia GC等［21］发现姜黄素的药理活性主要是它对免疫T细胞、免疫B细胞、巨噬细胞、中性白细胞、树突细胞等免疫细胞具有调节的作用。
莪术油作为传统的活血化淤中药近年来逐渐引起了医药界的重视,并在其资源、植化、药理、制剂、临床等方面进行了系统研究,证实莪术油是一个药理活性强、高效、安全低毒且对多种疾病有效的药物。肿瘤和心血管疾病是目前两大医学难题,莪术油在抗肿瘤和抗血栓活性及临床上有确切疗效。莪术油制剂在宫颈癌、肝癌及心血管疾病治疗方面均取得了令人满意的疗效。
5 讨论
姜黄属药材,基源相近,易混淆,药用上亦有所差异,彼此既有联系又有区别。但同科属近缘植物较多, 产地采收加工难以分辨，造成使用上存在品种不纯的情况。
姜黄属植物的传统生产技术还有待统一化、规范化改进。陈康等［22］在分析温郁金传统种植中存在的问题时，调查研究发现,温郁金传统种植中存在诸多问题,包括长期连作、种源退化等,严重地影响了温郁金植物所产药材的产量和品质。这些问题也是目前中药材种植生产上普遍存在的现象和共性问题。
由此看来，建立符合GAP要求的姜黄属植物绿色药材基地，使姜黄属植物原药材在农药残留量、重金属、主要化学成分方面符合国际标准，以便大力开发姜黄属植物的系列产品，对提高姜黄属植物产品的附加值，具有广阔的市场前景。
参考文献：
［1］ 王琰,王慕邹.姜黄属常用中药的研究进展［J］.中国药学杂志,2001,36(2):80-84.
［2］ Ishita C， Kaushik B， Uday B et al. Turmeric and curcumin： Biological actions and medicinal applications［J］ . Current Science， 2004，87(1)：44-53.
［3］ 黄初升,白素平,李瀛.天然线性二芳基庚烷类化合物［J］.天然产物研究与开发,1997,19(2):98-104.
［4］ 陈福北,黄初升,刘红星.姜黄属植物中姜黄素类化合物的研究概况［J］.广西师范学院学报(自然科学版),2007，6 (24)：95-101.
［5］ Matsuda H, Morikawa T, Ninomiya K et al. Absolute stereo structureof carabrano-type sesquiterpene and vasorelaxant-active sesquiterpe-nes from Zedoariae Rhizoma［J］. Tetrahedron, 2001, 57 (40): 8443.
［6］ Phan M G, Phan T S. Isolation of sesquiterpenoids from the rhizomes of vietnamese curcuma aromatica ［J］.Salisb. tap. Chi. hoa. hoc.2000, 38 (4): 96.
［7］ Li Y. Chemical compositions of curcuma aromatics used as traditional chinese medicine［J］. Journal of northwest university (Natural science edition ) 西北大学学报(自然科学版), 2000, 30 (5)： 4111.
［8］ Zhang J .Studies on chemical constituents from curcuma wenyujin. dissertation of master degree of dalian university of technology(大连理工大学硕士论文) ［D］. Dalian dalian university of technology, 2006.
［9］ Chen G. Chemical constituents of edgeworthia chrysantha and curcuma wenyujin. dissertation of master degree of zhejiang university of technology(浙江工业大学硕士论文) ［D］. Zhejiang: zhejiang university of technology, 2005.
［10］ Toume K, Sato M, Koyano T, et al. Cytotoxic dimeric sesquiterpe-noids from curcum a parviflora: isolation of three new parviflorenes and absolute stereochemistry of parviflorenes A, B, D, F,and G［J］. Tetrahedron, 2005, 61 (28)： 6700.
［11］ Huang K, Tao Z, Zhang G et al. Studies on chemical constituents of curcuma aromatica salisb［J］. China tournal of chinese materia medica (中国中药杂志)， 2000, 25 (3)： 163.
［12］ Toume K, Takahashi M, Yamaguchi K et al. Parviflorenes B-F,novel cytotoxic unsymmetrical sesquiterpene-dimers with threebackbone skeletons from curcum a parviflora ［J］. Tetrahedron, 2004, 60 (48)： 10817.
［13］ Yong C, Feng Q, Kyoko T et al . New sesquiterpenes and calebin derivatives from curcuma longa［J］. Chem.pharm bull. 2007, 55(6): 940-943.
［14］ 周欣,李章万,王道平等.姜科姜黄属植物有效成分的研究［J］. Fen xi ce shi xue bao(Journal of instrumental analysis)，分析测试学报,2004,11(23): 53-56.
［15］ 戚爱棣,于虹,朱晨.薄层扫描法测定姜黄、郁金、莪术中姜黄素的含量［J］.天津中医学院学报,2002, 21(2): 32-33.
［16］ 雷云霞,孙立立,杨书斌等.高效液相色谱法测定郁金饮片中姜黄素的含量［J］.中国药师,2007,10(6):603-605.
［17］ 薛玲,林秀丽,张惠云等.郁金中姜黄素类化合物的毛细管区带电泳法测定［J］.化学研究与应用,2006,18(4):368-371.
［18］ 刘洪玲.超声波辅助提取郁金挥发油及其化学成分分析［J］.时珍国医国药,2006, 17( 10): 1876-1877.
［19］ 宿树兰,欧阳臻,金晓勇.姜黄属几种药材的红外指纹图谱鉴别研究［J］.中成药,2006,10(28):1408-1410.
［20］ 杨承鸿,向智敏,姚煜东等.姜黄超临界提取物的高效液相色谱分析［J］.分析测试学报, 2005, 24 (2)： 86-88.
