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碱性土壤的特征范文1
关键词：氨氧化细菌;氨氧化古菌;碱性土壤;酸性土壤;环境因子
中图分类号：Q938.1+1 文献标识码：A DOI 编码：10.3969/j.issn.1006-6500.2015.12.011
Ecological Function of Ammonia Oxidizing Microorganisms in the Nitrogen Cycle and Their Influence Factors
ZHU Guo-jie1 ， ZHANG Na2， DU Wen1， LI Xiao-he1， WANG Chen1， WANG Xin-li1
（1. College of Resources and Environment of Linyi University， Linyi，Shandong 276005， China; 2. Financial Department of Linyi University， Linyi，Shandong 276005， China）
Abstract： Ammonia oxidation is the first step in nitrification and the rate limiting step. The main driver are ammonia oxidizing bacteria and archaea， which play an important role in the global nitrogen cycle. This paper mainly introduced the types and the development of the ammonia oxidizing bacteria and archaea. The relative contributions of the ammonia oxidizing bacteria and archaea to nitrification and environmental impact factors were summarized. Finally， the research prospect was put forward.
Key words： ammonia oxidizing bacteria; ammonia oxidizing archaea; alkaline soil; acid soil; environmental factors
硝化作用在土壤氮转化过程中是一个非常重要的步骤，它关系到外源铵态氮和矿化释放的氮在土壤氮循环中的转化以及土壤氮的损失。所涉及的过程关联着土壤的酸化、水体的富营养化以及温室气体N2O的排放等环境问题[1]。因此，硝化作用一直是氮转化过程中一个备受关注的环节。氨氧化作用是硝化作用的第一步反应，也是限速步骤[2]，其主要驱动者是氨氧化细菌（Ammonia-oxidizing bacteria，AOB）和氨氧化古菌（Ammonia-oxidizing archaea，AOA），因此对它们的研究引起了广泛的关注。
1 系统发育地位
1.1 氨氧化细菌
氨氧化细菌普遍存在于土壤、地表水和沉积物中，还被发现在建筑沙石、苏打以及南极冰层等一些极端的生态环境中也有存在。Woese等[3]基于16S rRNA结果比对发现，两类在系统发育上明显不同的类别组成了氨氧化细菌：一类是属于变形菌门（Proteobacteria），包含海洋硝化球菌（Nitrosococcus oceanus）的γ-亚纲;另一类也是属于变形菌门，包含活动硝化球菌（Nitrosococcus mobilis） 的β亚纲。变形菌门的β亚纲又包含3个分支：其一是Nitrosococcus mobilis;其二是欧洲亚硝化单胞菌（Nitrosomonas europaea）;其三是亚硝化螺旋菌（Nitrosospira） 、亚硝化叶菌（Nitrosovibrio） 和亚硝化弧菌（Nitrosolobus）。Head等[4]在基于16S rRNA的核苷酸序列对AOB的系统发育树开展同源性比较时，将亚硝化弧菌、亚硝化螺旋菌亚和硝化叶菌都归类到亚硝化螺旋菌属。分子系统发生学分析表明，陆地生态系统中的优势种群Nitrosospira和Nitrosomonas可以分成9个不同的系统发生簇（cluster）。
1.2 氨氧化古菌
在系统发育与进化方面，AOA形成了一类完全独立于AOB的进化分支。基于16SrRNA基因系统发育分析表明，聚类在泉古菌的不同AOA分支其生态来源也不同：聚类于Group 1.1a的AOA来源于海洋、大部分水体和沉积物;聚类于Group 1.1b的AOA来源于土壤及其它陆地环境。基于amoA基因，在系统发育树上嗜高温AOA独立于海洋和土壤分支。基于16S rRNA基因和AOA的amoA基因的系统发育分析结果显示，二者能很好地重合。除此之外， Group 1.1c类群也被发现，并认为它们可能也参与了氨氧化过程，但目前还没有找到相应的amoA序列[5]。
2 氨氧化微生物对土壤氮循环的相对贡献
研究表明，虽然地球环境中存在大量的氨氧化古菌和氨氧化古菌的amoA基因，但并不说明该基因一定会在驱动氨氧化过程中发挥作用[6]。
2.1 氨氧化细菌在碱性土壤中的主导作用
在中性和碱性土壤中，施肥尤其是高量氮肥的施入，显著改变了AOB的群落组成，并且数量也有增加，但对AOA却没有显著影响。暗示AOB在这些土壤中更加“活跃”。Shen等[7] 对河南封丘长期定位试验站中碱性潮土（pH=8.3～8.7）的研究中发现，不同施肥处理下AOB的数量均显著低于AOA，但不同施肥处理仅导致AOB群落结构发生了变化，对AOA的群落组成并没有产生明显的影响，而且只有AOB的丰度与与土壤硝化潜势呈显著正相关。推测在这些碱性潮土中主要是AOB对土壤硝化作用产生贡献。同样地，在对新西兰高氮草地土壤的研究中，Di等[8]也发现施氮肥增加了AOB的丰度和土壤的硝化强度，这种增加可被硝化抑制剂DCD明显抑制，对AOA却没有明显的影响。
利用DNA-SIP技术，Xia等[9]研究发现在河南封丘碱性潮土中，只有AOB参与了氨氧化过程和13CO2的固定，AOB在该土壤硝化作用中发挥了主导作用。Jia and Conrad[10]在对德国中性农田土壤进行研究时仅发现AOB能够同化CO2，推测AOA可能并没有参与土壤的硝化过程，或者因AOA只是利用了极少量的13CO2而没能分离到足够量的标记DNA，认为AOB是该土壤硝化作用的主要贡献者。同样，Jiang等[11]发现在碱性水稻土壤（pH=8.0）中硝化作用的主导者也是AOB（Nitrosospira Cluster 3）。Wang等[12]在对江西玉米地长期定位施肥土壤进行DNA-SIP研究时发现，不施肥对照、施N肥和NPK肥的土壤pH值为酸性，AOA在同化CO2的过程中占据了主导地位;而长期施有机肥的土壤pH值接近中性，主要是AOB参与了CO2的同化。
2.2 氨氧化古菌在酸性土壤中的主导作用
He等[13]通过对湖南祁阳旱地肥力及肥料效应长期定位试验点红壤的研究中发现，土壤pH值（pH= 3.7～5.8）因长期施用氮肥而显著降低，在8个不同施肥处理中，AOB的数量均显著低于AOA。不同施肥处理对土壤总细菌数量的影响并不明显，但显著影响了AOA和AOB的数量;而且AOB的群落组成在各处理之间没有显著差异，AOA的群落组成差异却非常明显[14]。这表明AOA的丰度和群落组成对长期施肥导致的土壤理化性质的变化所产生的响应比AOB更明显。而且，AOB和AOA的丰度与土壤硝化潜势呈显著正相关，推测酸性土壤中AOB和AOA对土壤硝化作用可能都有贡献。另有对我国南方酸性土壤中AOB和AOA群落组成调查的研究结果[15-16]也支持了这一推测。这些土壤中仅AOA的数量与土壤硝化潜势呈正相关，与AOB的数量并没有关系;而且茶园土壤中AOA与AOB的数量之比随pH值的降低而增加。这些结果表明：在酸性土壤氨氧化作用中，AOA可能比AOB更加活跃。
应用基于DNA分析的稳定性同位素探针技术（DNA-SIP） ，Zhang等[17]根据氨氧化微生物氧化氨的同时固定CO2进行自养生长这一原理，加入13C标记的CO2作为底物对土壤（pH=3.7）进行培养，发现“活跃的”氨氧化微生物是AOA中的Group 1.1a-associated类群，在氨氧化过程中发挥了主导作用，同化了13CO2进行了生长，并且氨氧化速率与AOA的amoA基因丰度呈显著正相关，但在AOB中没有发现这种现象。另外，Lu等[18]的研究结果同样表明Group 1.1a-associated类群是氨氧化作用的主要执行者。Wang等[19]在研究另一种酸性农田土壤时发现氨氧化作用的执行者是Group 1.1b类群。以上结果表明，氨氧化古菌主导了这些酸性土壤中的硝化作用。
AOA在酸性环境中发挥主要功能的可能机理包括[20]：（1） AOA对NH3的亲和力更高[21]，因此，在低浓度NH3的环境中更容易生长。酸性土壤的pH值较低，其中的氨多以NH4+的形态存在，NH3浓度较低，更适于对NH3亲和力较高的AOA生长。（2）很多研究表明，与无机氮相比，AOA的生长更易受有机氮的刺激，自养生长所利用的主要是有机质矿化所释放的低浓度NH3。另外，AOA也可能是混合营养型生长，直接利用土壤中的有机碳源[22]。因此，AOA比AOB具有更大的竞争优势。（3）AOA与AOB相比其生理生化和遗传特征更加独特，通过对几株纯培养的AOA基因组学的分析发现，AOA和AOB的氨氧化途径可能显著不同，而且AOA的氨氧化和碳固定过程能量的消耗明显减少，有助于它们在一些不利的环境中发挥作用[23]。
酸性土壤中AOA占主导与碱性和中性土壤中AOB占主导的研究结果，支持了这样一种猜测：两类氨氧化微生物的生态位具有明显的分化特征[24] 。即在中性和碱性土壤中，AOB发挥了功能活性;在低氮、强酸性和高温等较苛刻的环境中AOA是硝化作用的主要驱动者。近来从英国苏格兰酸性土壤中成功富积培养到的一株嗜酸氨氧化古菌Nitrosotalea devanaterra，其适宜的生长pH值为4.0～5.0，当pH>5.5时生长受抑制[25]，更进一步证实了以上观点。
3 环境因子对氨氧化微生物的影响
土壤拥有非常复杂的环境体系，其理化性状决定着土壤中微生物群落的数量和分布。土壤氨氧化微生物的分布除了与土壤养分状况紧密相关[26]，还与土壤pH值[27]、NH3浓度[28]、土壤管理方式[29]和植被[30]等有很大的关系。
3.1 pH值
硝化作用底物的生物可利用性和化学形态均受土壤pH值影响，同时pH值也影响AOB和AOA的生长和功能活性，进而影响它们对硝化作用的相对贡献[31]。随着农田土壤硝化作用的不断加强，显著降低了土壤的pH值，AOA的amoA丰度明显下降，表明pH值可能是影响土壤AOA数量的重要环境因子[32]。另有研究表明，在pH=8.3～8.7的碱性土壤[33]和pH=3.7～6.0[34]的酸性土壤中AOA的amoA基因丰度与pH值也呈现较好的负相关。但是也有研究表明，AOA的amoA基因丰度随着土壤pH值的升高而增加[35]，或者没有显著变化[36]。
Gubry-Rangin等[37]认为 pH值是唯一测量到的显著影响AOA群落和结构的土壤理化性质。在酸性土壤中，相对丰度较高的AOB是Nitrosospira cluster 2[38];而Carnol等[39]证明，在高氮负荷的酸性褐色土壤中AOB的群落是以Nitrosomonas europaea为主。
一般认为，在pH值<6.5的环境中AOB不易生长，其适宜生长的pH值范围为7.0～8.5。Yuan等[40]和Zhang等[41]的研究发现，在红壤pH值比较低的条件下对氨氧化微生物的群落结构具有选择性。另外，研究发现酸性和碱性土壤中氨氧化微生物的活性存在着明显差异。He等认为在酸性红壤中，氨氧化势与AOA的丰度呈正相关，而与AOB的丰度无关;相反地，Shen等[7]在研究中性和碱性土壤时发现，氨氧化势与AOB的丰度呈正相关。Hu等[42]通过高通量测序，认为pH值最能解释AOA和AOB的生态位分异;Wang等[12]利用DNA-SIP技术，发现长期定位施肥改变了土壤的pH值，“活跃的”氨氧化微生物群体也发生了变化。
3.2 土壤中NH3的浓度
氨的氧化为缓慢生长的硝化微生物提供唯一的能量，因此氨介质的可利用性被认为是AOA和AOB不同生态分异的主要影响因素[43]。以前的研究表明，一些含氨量很低的生态系统中，也有未知的氨氧化微生物出现，因为原位条件下氨介质的浓度显著低于AOB的生长需要[44]。同样，在调查不施肥、施矿质肥和矿质肥加有机肥时，发现amoA基因拷贝数的AOA与AOB之比在不施肥土壤中最高[45]。研究表明，在大量施肥的土壤或者湿地中AOB丰度和硝化强度显著正相关;而且AOA的生长受到高水平氨的抑制[46]。
在当前研究中从陆地或者海洋生态系统中培养或者富集古菌的抑制浓度是0.89～356 μmol・L-1，远低于AOB的可培养浓度394～40 000 μmol・L-1。这表明AOA具有更低更窄的介质生长范围。被富集的AOA的Km值仅为0.61～0.69[47]。相比较来说可培养AOB的Km常数是50～1 780 μmol・L-1，因此AOA具有更高的NH3亲和力，大于可培养AOB的200多倍[48]。说明AOA在pH值较低的低氨环境中相比AOB有更大的竞争能力。
3.3 温 度
合适的温度对于生物酶催化新陈代谢非常关键，从而影响AOA和AOB的组成和活性等。Urakawa等[49]研究发现，较低的温度会使AOB的数量和多样性降低。Avrahami等人[50]发现，在中温（10～25 ℃）时AOB的硝化潜势最高，低温（4 ℃）或高温（37 ℃）时会显著降低。在年平均气温差异非常明显的土壤中，酸性土壤（pH=5.0～5.8）中AOB的物种组成有差异，优势物种也不相同;弱碱性土壤中只有Nitrosospira cluster 3a随温度发生变化，且Cluster 3a只在高温低肥的土壤中存在。在水簇箱过滤系统中，温度较低时，AOA多样性也低[49]。Tourna等[51]进行微生态系统培养试验时，设计了不同的温度（10～30 ℃，5 ℃为一梯度）梯度，对其进行DGGE群落结构分析后发现，AOA群落结构在不同培养温度下差别较大。
3.4 通气与水分条件
大部分的氨氧化微生物属于好氧自养型微生物，需要在O2的参与下完成氧化NH4+产生ATP的过程。氧分压与含水量呈负相关性，过低和过高的含水量对土壤硝化作用均有不利的影响。含水量高时土壤中氧气含量低，对硝化微生物的代谢不利;含水量低时土壤中的氧气可以完全充满土壤，但干燥的土壤环境对硝化微生物的存活不利[52]。一般情况下认为，田间最大持水量（WHC）的 50%～70%为最适合硝化作用的土壤含水量[53]。在研究稻田土壤的硝化作用时发现：土壤的氧负压决定着淹水土壤中硝化作用是否存在，硝化微生物能否繁殖和存活;在一定范围内，硝化作用在低氧化还原电位条件下仍然可以进行;当硝化细菌的活性不被NH4+浓度所限制时，土壤硝化作用强度随着淹水层O2浓度的增加而显著增强[54]。稻田根际土壤与非根际土壤相比常常具有较高的氧化还原电势， AOB的amoA基因数量在非根际土壤和根际土壤中变化不明显，但是非根际土壤AOA amoA基因的拷贝数显著低于根际土壤，AOA与AOB的amoA 基因比值在1. 2～69. 3的范围内波动[55]。
4 结论与展望
氮循环过程中AOB和AOA的贡献问题一直是该领域研究的重点，与生态因子的改变密切相关。利用同位素示踪技术能准确定位AOB和AOA的生态功能，明确AOB和AOA在氨氧化作用中的相对贡献，具有重要的生态环境和生物进化意义。今后应尽可能地分离、筛选不同生态环境条件下的氨氧化微生物，研究它们生理生态功能和生化特征，进一步深化对硝化作用机制的认识。另外，还应从大尺度上研究土壤氨氧化微生物群落分布和功能的特点，进一步明确其时空演变特征和驱动氨氧化微生物生态位分异的主要环境因子。除此之外，今后研究的重点还有评估氨氧化微生物在硝化过程中的作用，包括对温室气体N2O释放的贡献和其他可能的生态功能等。
参考文献：
[1] GALLOWAY J N， DENTENER F J， CAPONE D G， et al. Nitrogen cycles： past， present， and future[J]. Biogeochemistry， 2004， 70： 153-226.
[2] KOWALCHUK G A， STEPHEN J R. Ammonia-oxidizing bacteria： a model for molecular microbial ecology[J]. Annual Review of Microbiology， 2001， 55： 485-529.
[3] WOESE C， STACKEBRANDT E， WEIBURG W G， et al. The phylogeny of purple bacteria： the alpha subdivision[J]. Systematic and Applied Microbiology， 1984， 5（3）： 315-326.
[4] HEAD I M， HIORNS W D， EMBLEY T M， et al. The phylogeny of autotrophic ammonia-oxidizing bacteria as determined by analysis of 16S ribosomal RNA gene sequences[J]. Journal of General Microbiology， 1993， 139（6）： 1147-1153.
[5] MINCER T J， CHURCH M J， TAYLOR L T， et al. Quantitative distribution of presumptive archaeal and bacterial nitrifiers in Monterey Bay and the North Pacific Sub tropical Gyre[J]. Environmental Microbiology， 2007（9）： 1162-1175.
[6] DE SOUZA N. Sequence is not everything[J]. Nature Methods， 2009，6（5）： 320-321.
[7] SHEN W S， LIN X G， GAO N， et al. Land use intensification affects soil microbial populations， functional diversity and related suppressiveness of cucumber Fusarium wilt in China’s Yangtze River Delta[J]. Plant and Soil， 2008， 306： 117-127.
[8] DI H J， CAMERON K， SHEN J P， et al. Nitrification driven by bacteria and not archaea in nitrogen-rich grassland soils[J]. Nature Geoscience， 2009， 2（9）： 621-624.
[9] XIA W W， ZHANG C X， ZENG X W， et al. Autotrophic growth of nitrifying community in an agricultural soil[J]. The ISME Journal， 2011（5）： 1226-1236.
[10] JIA Z J， CONRAD R. Bacteria rather than Archaea dominate microbial ammonia oxidation in an agricultural soil[J]. Environmental Microbiology， 2009，11（7）： 1658-1671.
[11] JIANG X J， HOU X Y， ZHOU X， et al. pH regulates key players of nitrification in paddy soils[J]. Soil Biology and Biochemistry， 2015， 81： 9-16.
[12] WANG X L， HAN C， ZHANG J B， et al. Long-term fertilization effects on active ammonia oxidizers in an acidic upland soil in China[J]. Soil Biology and Biochemistry， 2015， 84： 28-37.
[13] HE J Z， SHEN J P， ZHANG L M， et al. Quantitative analyses of the abundance and composition of ammonia-oxidizing bacteria and ammonia-oxidizing archaea of a Chinese upland red soil under long-term fertilization practices[J]. Environmental Microbiology， 2007（9）： 2364-2374.
[14] HEAD I M， HIORNS W D， EMBLEY T M， et al. The phylogeny of autotrophic ammonia-oxidizing bacteria as determined by analysis of 16S ribosomal RNA gene sequences[J]. Journal of general Microbiology， 1993， 139（6）： 1147-1153.
[15] YING J Y， ZHANG L M， HE J Z. Putative ammonia-oxidizing bacteria and archaea in an acidic red soil with different land utilization patterns[J]. Environmental Microbiology Reports， 2010， 2（2）： 304-312.
[16] YAO H， GAO Y， NICOL G W， et al. Links between ammonia oxidizer community structure， abundance， and nitrification potential in acidic soils[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2011， 77（13）： 4618-4625.
[17] ZHANG L M， HU H W， SHEN J P， et al. Ammonia-oxidizing archaea have more important role than ammonia-oxidizing bacteria in ammonia oxidation of strongly acidic soils[J]. The ISME Journal， 2012（6）： 1032-1045.
[18] LU L， HAN W， ZHANG J B， et al. Nitrification of archaeal ammonia oxidizers in acid soils is supported by hydrolysis of urea[J]. ISME J， 2012， 6（10）： 1978-1984.
[19] WANG B， ZHENG Y， HUANG R， et al. Active ammonia oxidizers in an acid soil are phylogenetically closely related to neutrophilic archaeon[J].Applied & Environmental Microbiology， 2013， 80（5）：1684-1691.
[20] 贺纪正，张丽梅.土壤氮素转化的关键微生物过程及机制[J].微生物学通报，2013， 40（1）： 98-108.
[21] MARTENS-HABBENA W， BERUBE P M， URAKAWA H， et al. Ammonia oxidation kinetics determine niche separation of nitrifying Archaea and Bacteria[J]. Nature， 2009， 461： 976-979.
[22] INGALLS A E， SHAH S R， HANSMAN R L， et al. Quantifying archaeal community autotrophy in the mesopelagic ocean using natural radiocarbon[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences， 2006， 103（17）： 6442-6447.
[23] WALKER C B， DE LA TORRE J R， KLOTZ M G， et al. Nitrosopumilus maritimus genome reveals unique mechanisms for nitrification and autotrophy in globally distributed marine crenarchaea[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences， 2010， 107（19）： 8818-8823.
[24] SCHLEPER C. Ammonia oxidation： different niches for bacteria and archaea[J]. The ISME Journal， 2010（4）： 1092-1094.
[25] LEHTOVIRTA-MORLEY L E， STOECKER K， VILCINSKAS A， et al. Cultivation of an obligate acidophilic ammonia oxidizer from a nitrifying acid soil[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America， 2011， 108： 15892-15897.
[26] SHEN J P， ZHANG L M， DI H J， et al. A review of ammonia-oxidizing bacteria and archaea in Chinese soils[J]. Front Microbiol， 2012（3）： 296.
[27] FINZI-HART J A， PETT-RIDGE J， WEBER P K， et al. Fixation and fate of C and N in the cyanobacterium Trichodesmium using nanometer-scale secondary ion mass spectrometry[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America， 2009， 106（15）： 6345-6350.
[28] HERRMANN M， SAUNDERS A M， SCHRAMM A. Archaea dominate the ammonia-oxidizing community in the rhizosphere of the freshwater macrophyte Littorella uniflora[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2008， 74： 259-270.
[29] WEIJERS J W H， SCHOUTEN S， LINDEN M， et al. Water table related variations in the abundance of intact archaeal membrane lipids in a Swedish peat bog [J]. FEMS Microbiology Letters， 2004， 239（1）： 51-56.
[30] AVRAHAMI S， BOHANNAN B J M. Response of Nitrosospira sp. strain AF-Like ammonia oxidizers to changes in temperature， soil moisture content， and fertilizer concentration[J]. Applied and Environmental Microbiology， 2007， 73（4）： 1166-1173.
[31] ZHANG J， ZHU T， CAI Z， et al. Nitrogen cycling in forest soils across climate gradients in Eastern China[J]. Plant & Soil， 2011， 342（1/2）：419-432.
[32] JIA Z J， CONRAD R. Bacteria rather than Archaea dominate microbial ammonia oxidation in an agricultural soil[J]. Environmental Microbiology， 2009， 11（7）： 1658-1671.
[33] SHEN J P， ZHANG L M， ZHU Y G， et al. Abundance and composition of ammonia-oxidizing bacteria and ammonia oxidizing archaea communities of an alkaline sandy loam[J]. Environmental Microbiology， 2008， 10（6）： 1601-1611.
[34] HE J Z， SHEN J P， ZHANG L M， et al. Quantitative analyses of the abundance and composition of ammonia-oxidizing bacteria and ammonia-oxidizing archaea of a Chinese upland red soil under long-term fertilization practices[J]. Environmental Microbiology， 2007（9）： 2364-2374.
[35] NICOL G W， LEININGER S， SCHLEPER C， et al. The influence of soil pH on the diversity， abundance and transcriptional activity of ammonia oxidizing archaea and bacteria[J]. Environmental Microbiology， 2008， 10（11）： 2966-2978.
[36] ADAIR K， SCHWARTZ E. Evidence that ammonia-oxidizing archaea are more abundant than ammonia-oxidizing bacteria in semiarid soils of northern Arizona， USA [J]. Microbial Ecology， 2008， 56（3）： 420-426.
[37] GUBRY-RANGIN C， HAI B， QUINCE C， et al. Niche specialization of terrestrial archaeal ammonia oxidizers[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences， 2011， 108（52）： 21206-21211.
[38] STEPHEN J R， KOWALCHUK G A， BRUNS M A V， et al. Analysis of β-subgroup proteobacterial ammonia oxidizer populations in soil by denaturing gradient gel electrophoresis analysis and hierarchical phylogenetic probing[J]. Appl Environ Microbiol， 1998， 64（8）： 2958-2965.
[39] CARNOL M， KOWALCHUK G A， DE BOEr W. Nitrosomonas europaealike bacteria detected as the dominant bsubclass Proteobacteria ammonia oxidisers in reference and limed forest soils[J]. Soil Biology & Biochemistry， 2002， 34：1047-1050.
[40] YUAN F， RAN W， HU J， et al. Ammonia-oxidizing bacteria communities and their influence on the nitrification potential of Chinese soils measured by denaturing gradient gel electrophoresis （DGGE）[J]. Acta Ecological Sinica， 2005， 25（6）： 1318-1324.
[41] ZHANG I N，CAO H. RFLP analysis of AOB-specific 16s rDNA library from red soil enrichment culture[J]. Acta Pedologica Sinica， 2006， 43（6）：635-641.
[42] HU H W， ZHANG L M， DAI Y， et al. pH-dependent distribution of soil ammonia oxidizers across a large geographical scale as revealed by high-throughput pyrosequencing[J]. Journal of Soils and Sediments， 2013， 13（8）： 1439-1449.
[43] MARTENS-HABBENA W， BERUBE P M， URAKAWA H， et al. Ammonia oxidation kinetics determine niche separation of nitrifying Archaea and Bacteria[J]. Nature， 2009， 461： 976-979.
[44] PROSSER J I. Autotrophic nitri cation in bacteria[J]. Advances in Microbial Physiology， 1989， 30： 125-181.
[45] LEININGER S， URICH T， SCHLOTER M， et al. Archaea predominate among ammonia-oxidizing prokaryotes in soils[J]. Nature， 2006， 442： 806-809.
[46] VERHAMME D T， PROSSER J I， NICOL G W. Ammonia concentration determines differential growth of ammonia-oxidising archaea and bacteria in soil micro-cosms[J]. The ISME Journal， 2011， 5（6）： 1067-1071.
[47] PARK B J， PARK S J， YOON D N， et al. Culti-vation of autotrophic ammonia-oxidizing archaea from marine sediments in coculture with sulfur-oxidizing bacteria[J]. Applied and Environmental Microbi-ology， 2010， 76： 7575-7587.
[48] MARTENS-HABBENA W， BERUBE P M， URAKAWA H， et al. Ammonia oxidation kinetics determine niche separation of nitrifying Archaea and Bacteria[J]. Nature， 2009， 461： 976-979.
[49] URAKAWA H， TAJIMA Y， NUMATA Y， et al. Low temperature decreases the phylogenetic diversity of ammonia-oxidizing archaea and bacteria in aquarium biofiltration systems[J]. Appl Environ Microbiol， 2008， 74（3）： 894-900.
[50] AVRAHAMI S， CONRAD R. Patterns of community change among ammonia oxidizers in meadow soils upon long-term incubation at different temperatures[J]. Appl Environ Microbiol， 2003， 69（10）： 6152-6164.
[51] TOURNA M， FREITAG T E， NICOL G W， et al. Growth， activity and temperature responses of ammonia-oxidizing archaea and bacteria in soil microcosms[J]. Environmental Microbiology， 2008， 10（5）： 1357-1364.
[52] 朱兆良， 文启孝. 中国土壤氮素[M]. 南京：江苏科技出版社， 1992.
[53] 李良谟，潘映华，周秀如，等. 太湖地区主要类型土壤的硝化作用及其影响因素[J]. 土壤，1987（6）：289-293.
碱性土壤的特征范文2
关键词:园林植物;植物配置;园林功能;艺术性
中图分类号:S688 文献标识码:A 文章编号:1674-0432(2010)-08-0198-1
随着社会的发展,人们生活水平的提高,精神需求逐渐成为大家追求的目标。园林景观作为现代社会文明进步的直接体现,很大程度上影响了我们的审美观。而园林植物作为园林景观的必要材料,只有采用科学合理的配置方式和趋于完美的配置方案,才能创造出优美的景观效果。园林植物的配置设计,是园林设计师的结晶,也是我们园林文化艺术的直接体现。做好园林植物配置工作,需要注意以下三个方面。
1 合理选择植物
植物的选择,是园林配置设计的首要条件。众所周知,不同的园林植物,生态和形态特征也是不尽相同的,所以在进行植物配置时,应因地制宜,掌握不同植物的特性,物尽其材。总体来说,植物配置依据有以下几种:
1.1 本地的环境条件
这里所说的环境条件,包括气候和土壤两个方面,其中,气候是考虑首选,因为气候会影响植物的生存,进而影响植物的配置。选择园林植物时,要主次分明,条理清晰,乡土植物是主要的配置对象。这样可以为园林植物提供正常的生长发育环境,同时也反映了各个地区植物风格的不同。另外,土壤环境主要是指当地的pH值,不同的植物要求的土壤条件不同,pH值范围也是不同的。通常我们所说的酸性土壤,其土壤成分含有较高的氢离子和铁离子,钙离子和镁离子偏少,而碱性土壤是指那种含有较高的钙离子和镁离子,而氢离子较少的性质的土壤。据调查,我国北方多是中性偏碱性土壤,适宜柽柳、枸杞、锦鸡儿、榆叶梅等植物的生长,而南方多中性偏酸性土壤,适宜种植山茶、杜鹃、米兰等植物。
1.2 符合环保要求
近年来,环保作为社会的主题,逐渐深入到人们生活的各个环节。园林配置作为一项和环境息息相关的活动,同样要响应环保的号召。在众多的园林植物中,有的具有绿化、美化环境的作用,有的具有防沙固土、防火杀菌、隔离噪音、拦截有害气体的作用。因此,我们在进行植物配置时,要熟悉每种植物的功能,根据当地的环境需要,合理配置。
1.3 了解绿地的性质
在街道绿地、庭园绿化时,应提前掌握绿地性质,以便选择适当树种进行配置。最后,园林植物配置中,不能只求数量,不关注效果。用于种植配置的植物种类,要按照园林设计的原则,合理分配,以求园林布局的统一性和规范性。
2 巧妙配置,增加园林建筑空间层次
在园林植物配置中,拥有层次感也是园林景观设计的重要内容。分层配置,可以让不同的植物合理搭配,扬长避短,以达到观赏的效果。例如:很多植物枝繁叶茂,其交织成的网络网络稠密到一定程度,便会给人一种界面的视觉效果,可以起到限定空间的作用。这种界面虽然没有明确的界限,但是只要巧妙利用,同样可以达到和谐之美。例如:园林植物适当配置,疏密相间,高下相称,与周围建筑相呼应,构成一幅和谐的画面。
园林植物离不开建筑环境,所以配置植物时,也要考虑到园林周围的建筑因素。如果园林建筑围合的空间,面积比较大,但是高度有限,不进行适当植物配置,就会给人一种突兀的感觉。而枝繁叶茂的林木则可以补偿园林建筑高度不足,提升空间感。这时,可以考虑广种密植的乔木,让它们在园林建筑之上再形成一段较稀疏的界面,可以起到围合空间的作用。
3 合理搭配植物形态和色彩
在园林植物配置时,还要充分考虑地形地貌条件,以便配置不同形态色彩的植物,避免造成视角上的抵触和繁杂。例如:观花植物和观叶植物要相互搭配,互相结合,这样不至于出现植物色彩单调的现象。观赏花木中有一类叶色漂亮、多变的植物,叶色紫红的红叶李、红枫,秋季变红叶的槭树类,变黄叶的银杏等就是典型的代表。这些组合大大提升了观赏性能,延长了观赏期。而观叶树作为景观的门面,应作为主景放在显要位置上。除此之外,很多常绿树种也有不同程度的观赏效果,选择色度对比大的种类进行搭配也是不错的配置方式。我们应在视觉的基础上,潜心研究,争取将园林的观赏性能发挥到极致。
4 结语
碱性土壤的特征范文3
【关键词】土壤；玉米；重金属；相关性；富集系数
0 前言
邯邢铁矿区位于河北省中南部的武安市和沙河市，地处太行山脉和华北平原交汇处。该区矿产资源丰富、农副产品品种齐全。作为农作物生长条件之一的土壤是重要的环境介质，其质量的好坏关系到人类的健康和社会的发展。由于邯邢铁矿区复杂的自然条件以及采矿活动的影响，排放到环境中的污染物使土壤和农作物受到影响，从而影响人类的健康。因此研究该地区土壤及农作物中的重金属含量是否超标及其相关性可以为该地区农业生产环境质量评价和改善农业生态环境提供科学依据。
1 样品的采集与测试方法
1.1 样品的采集
邯邢铁矿区部署了108平方千米的面积性土壤测量工作，以采样点空间分布总体均匀、采矿活动中心区适当加密为原则，布设土壤采样点117个，采集0～20cm表层土壤样，土壤类型主要为棕壤和褐土。在采取表层土壤的同时，采集了105个玉米样品，每个玉米样品由2～4穗玉米组成。样品经加工后送到检测中心进行指标元素测定。
1.2 样品分析测试方法
本文主要分析土壤和玉米中的6种元素，即As、Hg、Cu、Cd、Pb、Cr。
玉米样品中的As、Hg检测仪器主要是AFS-8130原子荧光光度计，Cr、Cu、Cd、Pb的测定来自电感耦合ICP-MS等离子体质谱仪。土壤中的Cr、Zn、Pb含量通过ZSX100eX荧光光谱仪来测定。
2 土壤中的重金属含量及评价
本区处于温带大陆性半干早季风气候区，具有春燥多风少雨、夏热多雨、秋高气爽、冬寒少雪的特点，年平均气温12.8℃，年平均降水量494.6～619.6毫米。受当地岩性石灰岩碳酸钙的影响，研究区表层土壤理化环境指标pH值平均值为8.3，属中偏碱性土壤。一般情况下，作物在pH值5.5～8.5的土壤中均能正常生长，当土壤pH值为6.7～8.5时，还具有一定的缓冲性能。因此在研究的区域内，土壤的pH值不会影响大宗作物的正常生长。[1]
为了确定该区土壤污染程度，以我国土壤环境质量标准中偏碱性土壤重金属含量限定值为评价标准，评价该区土壤环境质量状况。由表1可看出，6种重金属含量均超土壤环境质量一级标准，且As、Cu、Cd的超标率很高；As、Cu超过土壤环境质量二级标准。
根据尾矿沙中重金属含量值，Cu的平均含量是134×10-6，Cr是352×10-6，它们含量都很高，这与土壤中相应元素有较好的对应性，可见土壤中Cu、Cr主要来源于尾矿沙。Cd、Hg、Pb主要是由煤矿的污染导致的，这些元素在煤中大量存在，煤燃烧后呈气态或粉尘进入大气，最终沉降在地表形成污染[2-3]。土壤中重金属的超标，将直接影响农作物的生长，导致重金属在动植物体内的累积，对人类的健康和环境可持续发展将造成影响。
3 玉米中重金属含量及评价
表2是邯邢铁矿区玉米中重金属含量的测定结果，结合我国颁布的无公害食品、绿色食品中元素限量标准来判断玉米中重金属是否超标。可以看出，玉米中Cr超标最为严重，超标率达33.33%，同时Pb含量也较高，按绿色食品标准，超标率达0.91%，其它四种重金属含量均在绿色食品标准、无公害食品标准范围之内。
值得注意的是，玉米中Cr含量高与当地地下水中Cr含量有关。研究区地表水不发育，几乎大大小小河流全部断流，农业生产灌溉用水主要来自于地下浅层。据资料表明地下浅水层Cr的含量为0.67微克[4]，严重超过水的三类标准。土壤中高含量的重金属被玉米吸收、富集，长期被食用会危及人体健康。
4 土壤与玉米中重金属的相关性
将邯邢铁矿区玉米中6种元素的含量与土壤中相应元素的含量进行对比分析，结果发现它们之间并无明显的相关性。例如，研究区土壤中的铬含量在60mg/kg左右，低于土壤一级标准，而玉米中的铬含量在1mg/kg左右，超出无公害食品标准。散点图的趋势线（如图1）近于水平，说明土壤中铬含量与玉米中铬含量无明显相关性。
经计算机处理得到的相关系数如下表3，可以看出，玉米与土壤中的重金属元素的相关系数值均很小，这进一步说明了该地区玉米与土壤中重金属含量无显著的相关性。
5 结果讨论
通过土壤、玉米中重金属含量测定，我们知道土壤中的污染因子为As、Cu、Cd，而玉米中的Cr、Pb含量很高，二者之间没有显著的相关性。出现此现象的原因很多，本文对此作了以下解释。
玉米能从土壤中摄取元素并在体内积累，积累量取决于在环境中的含量和形态。研究区土壤中这几种重金属以多种形式存在，其含量之和超过土壤环境质量标准，污染状况值得关注。
土壤中的重金属在不同的氧化还原态和酸碱性条件下其溶解性不同，在还原态和碱性条件下的重金属多为难溶性，而植物吸收的重金属多为土壤中有效态重金属，如具有水溶性或吸附性好的重金属[5]。
玉米中的As、Cu等含量与土壤中的相应元素含量无显著性相关性系，这主要与当地土壤的pH值有一定的关系。土壤的pH值影响着重金属在土壤中的存在形态。邯邢地区土壤的pH值较高，土壤中难溶性砷化物较多，有效态铜含量低，可溶性铅含量低，玉米对土壤中重金属的吸收量有限[6]。
6 小结
由于邯邢铁矿区采矿、冶金活动的进行，其土壤中的As、Cu、Cd均已超标，加之用污染的浅层水灌溉农田，玉米中Cr、Pb含量也很高。重金属在土壤和玉米中的演化，跟土壤的pH值有关，将直接影响农作物的生长，农产品中重金属含量超标会危及人体健康。显然矿区环境污染已对农业生产和人体健康构成了威胁。土壤环境容量有限，如不及时加以控制，后果将不堪设想。控制污染源，调整农业生产结构，减少土壤重金属对作物的危害，就是减轻对人类的危害。
【参考文献】
[1]邓金火.河北省邯邢铁矿区尾矿资源化与环境地球化学特征研究[D].石家庄经济学院，2013.
[2]张明亮，等.煤矸石重金属释放活性及其污染土壤的生态风险评价[J].水土保持学报，2011，25（4）：249-253.
[3]田贺忠，等.中国燃煤大气硒排放及其污染控制[J].中国电力，2009，342（8）：53-57.
[4]徐国志，等.邯邢铁矿区矿山环境生态地球化学评价[J].物探与化探，2014.
碱性土壤的特征范文4
关键词：五叶地锦；生物学特性；园林绿化；应用
1 科属、生态学特性
1.1 五叶地锦： parthenocissus quinquefolia planch葡萄科、爬山虎属。
1.2 形态特征：落叶藤本植物，幼枝紫红色，卷须与叶对生，5-12分枝，顶端吸盘大，掌状复叶，具长柄，小叶5片，质较厚，卵状长椭圆形或倒长卵形，长4-10cm，先端尖，基部楔形，缘具大齿，表面暗绿色，背面稍具白粉并有毛。聚伞花序集成圆锥状，浆果近球形，径约6mm，成熟时蓝黑色，稍带白粉，具1-3粒种子，花期7-8月，果9-10月成熟。
1.3 分布：原产美国东部，我国有栽培。
1.4 生态习性：喜温暖气候，具有一定的耐寒能力，耐荫、耐贫瘠，对土壤与气候适应性较强，干燥条件下也能生存。在中性或偏碱性土壤中均可生长，并具有一定的抗盐碱能力，生长旺盛，抗病性强，病虫害少。
1.5 繁殖方法：常用扦插繁殖，无论是多年生枝条，还是当年生嫩枝条均易生根。插后20余天即可生根，即有切口愈伤根，也有皮孔根，枝条着地见湿也能生根，截移出即为新株。播种、压条也可繁殖。
2 五叶地锦在园林中应用的优越性
2.1 繁殖容易：其繁殖方法可用扦插、播种、压条繁殖。投资低，便于管理，耐干旱，耐贫瘠，管理粗放，不需修剪，寿命长，若管理得当寿命可长达几十年。
2.2 生长迅速成型快：可忍受高达50℃的路面高温。年生长量可达2米以上，而且叶片较大，覆盖面积较大。整株占地面积小，靠吸盘向空中发展，是地被和护坡的好材料。
2.3 病虫害少：因为植物的抗逆性强，遭受病害和虫害的侵袭较少，不容易感染病虫害，而且绵羊、山羊也不食其叶、茎。
2.4 可开发利用在制酒业和北药开发中：因其果实可酿酒，根可入药，所以在制酒和医药领域有被广泛开发利用的前景。
3 五叶地锦在园林中应用
五叶地锦是落叶攀缘植物，生长迅速，生存能力强，覆盖面积大，病虫害少，有较强的吸盘，是绝好的垂直绿化材料。
它不仅可用于城市绿化，还可用于乡镇绿化或公路护坡绿化。它在春季、夏季形成一片翠绿色屏障，秋季叶色变黄至变红，是秋季一大景观，可与香山红叶媲美，它不仅是绿化美化的好材料,更是彩化、净化的好材料。
其主要栽植方式：
碱性土壤的特征范文5
关键词 三叶草；草坪；种植技术
中图分类号 S688.4 文献标识码 B 文章编号 1007-5739（2013）10-0155-01
三叶草是一种优良的草坪植物，具有很好的绿化和观赏价值，其茎叶茂盛，花叶兼优，而且具有绿色期长、耐修剪、易种植、繁殖快、造价低等优点，适宜于宁南地区用作观赏式草坪，也可作为地被植物点缀在庭院草坪上，或直接用于水保草坪[1]。
1 三叶草的特征特性
1.1 植物学特性
三叶草，又名车轴草，为豆科三叶草属一年生或多年生草本植物。其原产欧洲，有300多种，主要分布在西欧、北美、大洋洲和我国东北部、山东以及华东地区。大多数为野生种，少数为重要牧草、蜜源和草坪植物[2]。目前，我国草坪种植较多的为红三叶、白三叶和杂三叶，其植物学特性如表1所示。
1.2 生长习性
三叶草喜湿润，较耐阴，多生于低湿草地、河岸、路边及林缘下、山坡，耐干旱、耐寒。抗寒性和抗热性以红三叶最差，夏季温度超过35 ℃，红三叶草就受到抑制，冬季可耐 -15 ℃低温。
因有根瘤菌固氮，三叶草对土质要求不严，在瘠薄土壤上也能生长。红三叶喜中性和微酸性土壤，适宜pH值为6～7，以排水良好、土壤肥沃的黏壤土生长最佳。白三叶耐酸性土壤，适宜pH值5.6～7.0，在pH值4.5的土壤上亦能生长，不耐盐碱。杂三叶稍耐酸性和碱性土壤。
三叶草生长较快，有早青、晚黄的特点，可观叶180 d，观花120 d。耐践踏，适于修剪。茎易倒，但不易折断。
2 种植技术
2.1 整地
三叶草种子细小，要求精细整地。整地前先浇水，待土壤干湿适度时整地，先翻耕土壤40～50 cm，弄碎土块，清除砖石、瓦片、残根、断茎及杂草，并施入农家肥37.5～45.0 t/hm2或普通过磷酸钙750 kg/hm2、磷酸二铵150 kg/hm2、尿素75 kg/hm2作底肥。
2.2 播种
宁南地区一般以春播为宜，播种时间一般为4月初至5月底，纯种播种播量为30～60 kg/hm2，混和播种播量为15～30 kg/hm2。可采用人工开沟条播或用撒播机进行撒播，覆土厚度1～2 cm。有条件时，播种后可采用白色透气膜或遮荫网进行覆盖，出苗后及时揭膜，以防烧苗[3]。
2.3 浇灌
三叶草草坪种植可以安装自动喷水头，采用喷水式浇灌，每个喷水头可控制30～50 m2的面积。浇灌时，选择晴天10：00左右或16：00左右，打开水源，喷头自动旋转将水喷洒地面，以达到清洗叶面和根部灌溉的作用。
2.4 施肥
三叶草种植后，当年不需施肥。从第2年起，为保证其正常生长发育，最好在早春和秋季进行追肥，第1次在返青后施肥，第2次在秋季8—9月施肥。生长季节可进行根外追肥，喷洒磷酸二氢钾、喷施宝、叶面宝等速溶性复合肥料，溶液浓度一般控制在3%～5%范围内。
2.5 中耕除草
三叶草苗期生长缓慢，应注意中耕除草。中耕时用小锄疏松表土，以减少水分蒸发，增加土温，流通土壤内的空气。草坪一经形成，即不怕杂草竞争，可减少除草次数。中耕可同时除草，但除草不能代替中耕，在雨后或灌溉之后，没有杂草也要进行中耕[4]。
2.6 修剪
当生长过高时可踩踏或用草坪机进行修剪，3～5 d即可恢复生长，修剪长度在8～10 cm。修剪后20 d左右则花叶并长。但要注意冬季植株因受冻硬脆，不宜践踏。
2.7 病虫害防治
三叶草病虫害一般不多，常见的有白粉病和蚂蚁危害。
白粉病是一种严重影响观赏价值、有损植株健康的病害，主要发生在植株的叶片及嫩梢上，多在6月以后开始发生，7月以后叶面逐渐布满白色粉层。初秋在白色粉层中形成黄色小圆点，后逐渐变深，终成黑褐色。严重时叶片枯死早落，甚至蔓延整个植株，使植株停止生长并逐渐萎缩死亡。种植时可增施磷、钾肥，以提高植株抗性[5]。发病初期喷施25%粉锈宁可湿性粉剂2 000倍液，或粉锈宁乳剂4 000倍液，托布津或多菌灵500～1 000倍液。
蚂蚁不直接为害植株，但常在根茎周围土中做窝，影响观赏，可用70%灭蚁灵粉直接喷洒于有蚁群的根际土面或蚁窝、蚁道周围，或拌成饵料撒施。
3 参考文献
[1] 于振文，张保军.作物栽培学各论[M].北京：中国农业出版社，2003：484-485.
[2] 徐峰，王婧.园林绿化工培训教程[M].北京：金盾出版社，2008：72-83.
[3] 王莲英，刘淑敏.花卉学[M].北京：中国林业出版社，1988：445-446.
碱性土壤的特征范文6
核桃喜温暖而湿润的环境条件，但也比较耐寒，在北纬41°以南、年降雨量500mm的地区大部分可生长。垂直分布在1100～1700m之间。核桃喜光，对土壤要求不严，以土层比较深厚、排水良好的沙壤土生长最适宜，在中性及微碱性土壤上生长较好，不适宜盐碱地生长。核桃为风媒花，吹动微风有助花粉传播，可增加自然坐果率。静宁属于黄土高原暖温带湿润区，土层深厚，境内海拔1340～2245m，年均降雨量423mm，土壤微碱性。显然，静宁不是核桃最理想的栽培地，特别是高海拔地区，干旱、低温、土壤贫瘠均不利于核桃的生长。所以，要想在静宁高海拔地区种植核桃，除加强常规管理外，必须注意以下几点。
1选择早实优质品种
目前生产中结果期早的核桃品种主要有辽核系列、清香、绿岭、新疆纸皮核桃、陕西扶风隔年核桃等。在选用早实核桃的同时，所选的品种应该具备取仁容易、出仁率高、品质好、含油量高的特征。同时，推广早实品种有利于早受益。大多数核桃品种实生苗在栽后7～8年才能进入结果期，而早实品种具有生长快、结果早的特点，在生产中应积极推广栽植。
2提高建园质量
应选择土层深厚、坡度较缓（小于20°）的阳坡栽植，建园前，先进行坡改梯，治理后再行栽植。应避免在风口、土层过浅、地下水位较高的地段建园。早实核桃品种树势多中庸，加之静宁高海拔地区降水稀少，树体生长受到限制，树冠可有效控制，可适当进行密植，以利于群体增产。可采用3m×5m、4m×5m株行距。静宁高海拔地区冬季寒冷，冬春风大，苗木栽植后越冬困难，栽植时间上应以春季为主。春栽时应尽量缩短苗木根系在空气中的暴露时间，自育苗应边起苗边栽植，外调苗栽前应进行浸根补水，以促进成活。栽植时注意采用深坑浅埋法栽植。由于核桃主根较长，定植穴应挖深，通过深挖定植穴疏松土壤，有利于根系生长，形成强大根群。挖穴时，表土、心土分置，用表土和有机肥填坑，进行微区土壤改良，优化根系生长环境，以利于植株旺长。定植穴深至少应在0．8m左右，埋土后留20cm左右的坑，以利于聚水，提高栽植成活率。同时最好2～3个品种混栽，促进授粉，提高坐果率。
3加强幼树防寒管理
核桃幼树抗寒性较差，冬季常不能安全越冬，易发生抽条干枯现象，造成死苗，导致园貌不整齐，不利于产量提高。因而幼树防寒是静宁核桃栽培中很关键的管理环节之一，生产中可采用的措施有：①定植2～3年的大苗，要求组织充实、抗寒性强，可有效抵御冻害现象的发生。②初定植的幼树，可将编织袋子底部剪掉，套在树体上，内填半干不湿的土壤，进行树体保护，以减少抽条现象的发生。③3～4年生的树，可采用主干绑草、缠纸等措施，进行树体保护。④5年生以上的树，可采用冬季树干涂白的方法，以减轻冻害的发生。⑤加强栽培管理，保证树体适期停长。在年生长周期中，前期应加强肥水管理，可喷布0．3％尿素，促进营养生长；7月份后控制肥水供给，喷布3％过磷酸钙浸出液，以利于组织充实，提高抗寒能力。
4保墒抗旱
降水稀少、干旱缺墒是静宁核桃生产中的主要制约因素之一，生产中可借鉴苹果生产中覆盖保墒的成功经验，通过覆沙、覆草、覆膜措施的综合应用，可有效克服干旱的不利影响，保证树体健壮生长。