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白细胞范文1
【关键词】 尿液;白细胞酯酶试验;镜检白细胞;分析
随着尿液分析仪的广泛使用,干化学试剂带法已作为尿液检验的常规项目;尿沉渣人工镜检耗时、费力,以致有许多工作人员不愿意进行此项检验。笔者使用两种方法联合检测286例尿液标本,将其中的有关白细胞检验项目进行统计分析,结果报告如下。
1 材料与方法
1.1标本来源 本院门诊以及住院患者共286例,年龄6~69岁,平均29岁。其中男131例,女155例。
1.2 方法 干化学法白细胞酯酶试验:使用Uritest-200尿液分析仪及其配套试剂,严格按照使用要求及说明,进行实验操作。取新鲜尿液10 ml,混匀,浸入检测试纸条,1 s后取出,放置于仪器内自动检测,打印报告结果。结果报告:(-)、(±)、(+)、(++)、(+++)、(++++)。本次实验,白细胞酯酶试验检测结果(±)统计为阳性。镜检白细胞:留取新鲜尿液标本10.0 ml于试管中,在1200~1300 r/min转速条件下,离心 5 min,弃去上清液,留沉渣0.2 ml。充分混匀后,取20ul 滴在载玻片上,加盖盖玻片(1.8~1.8 cm ),使用OLYMPUS光学显微镜进行检测。先以较弱的光线,使用低倍镜观察全貌,再用高倍镜仔细辨认白细胞(WBC)。结果报告:WBC: x 个/高倍视野(HPF )[1],本次实验,白细胞:>5个/HPF 判为阳性。将检验结果进行统计,比较分析。
2 结果
见表1。
表1
286例尿液白细胞酯酶试验与镜检白细胞检验结果(例)
白细胞酯酶试验镜检白细胞结果
阳性阴性合计
阳性17421
阴性3262265
合计 20266286
干化学法白细胞酯酶试验阳性率为7.3%,镜检白细胞阳性率为7.0%。
3 讨论
两种方法检测阳性率相差不大,但是阴性、阳性结果之间有相互交叉的情况,这与各自不同的实验原理及其相关影响因素有着密切的关系。白细胞酯酶试验原理:细胞胞质含嗜苯胺蓝颗粒的细胞,如中性粒细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞、单核细胞和巨噬细胞等均含有白细胞酯酶,该酶能水解吲哚酚酯,生成吲哚酚和有机酸,吲哚酚可进一步氧化形成靛蓝;或吲哚酚和重氮盐发生反应生成重氮色素,使试带发生颜色变化,尿液分析仪检测这种变化,从而报告出相应的检验结果[2]。镜检白细胞则是利用显微镜的放大作用,将细胞等有形成分呈现于镜下(如进行染色分析,则效果更佳),根据观察到的情况,进行结果报告。至于尿液白细胞酯酶试验阳性,镜检白细胞阴性的结果,可能存在以下原因:(1)阴道分泌物污染可以导尿液白细胞酯酶试验致假阳性[1];(2)尿液标本放置时间过长、低渗尿、高PH尿或者标本处置不当等,尿液中的白细胞被破坏,显微镜下看不见,或仅见细胞碎片;(3)尿沉渣内白细胞含量较少且未充分混匀,细胞分布不均,以至镜检结果阴性。这种现象在白细胞酯酶试验结果为(±)的情形较易出现。尿液白细胞酯酶试验结果阴性,镜检白细胞阳性,其可能原因有 :(1)尿液中蛋白浓度高(>5.0 g/L)、葡萄糖浓度高(大于30.0 g/L)或尿液比密度降低等均可导致白细胞酯酶试验假阴性结果;(2)尿中某些药物的影响,如尿中高浓度四环素可以导致白细胞酯酶试验假阴性;(3)试带失效、某些因素致白细胞酯酶试剂灵敏度降低,未能显示阳性结果;(4)尿液白细胞中的单核细胞、淋巴细胞不与白细胞酯酶试剂发生反应。在肾移置患者发生排异反应时,尿中以淋巴细胞为主或其他病因引起的单核细胞增多的尿液时,白细胞酯酶为阴性结果[3];(5)尿中或者某些上皮细胞、阴道滴虫等误判为白细胞等;(6)其他人为错误等。
参 考 文 献
[1] 叶应妩,王毓三,申子瑜.全国临床检验操作规程.东南大学出版社,2006:293-296.
白细胞范文2
【关键词】
全血；去白细胞全血；去白细胞悬浮红细胞；储存期末溶血率
溶血是红细胞膜的完整性受到破损或裂解释放血红蛋白引起血浆颜色改变，储存期末红细胞制品的溶血程度是评价保存红细胞质量的重要参数，常用溶血率来表示。虽然已有多种措施能提高红细胞在血液制备、保存和运输过程中的稳定性，但红细胞离体后仍将增加溶血的危险，其溶血率并随保存期的延长而明显升高。红细胞制品中游离血红蛋白含量过高，对于接受输血治疗的患者具有潜在的安全隐患[1]。《全血及成分血质量要求（GB18469-2012）》中增加了红细胞储存期末溶血率标准，作者于2012年8～12月对全血﹑去白全血和去白细胞悬浮红细胞储存期末溶血率进行比较。现报告如下。
1材料与方法
1.1材料采血用由山东威高集团医用高分子有限公司提供的采血袋与白细胞过滤器一体的四联袋（血液保存液为CPD-A；红细胞保存液为MAP，含腺嘌呤、甘露醇﹑氯化钠﹑枸橼酸﹑枸橼酸钠、葡萄糖和磷酸二氢钠），大容量低温离心机（德国贺力士），低温操作台，分浆夹，热合机，无菌结合机，冰箱（4℃±2℃，日本SANYO公司）。
3讨论
由表Ⅰ可以看出，三种不同血液制品储存期末溶血率均低于0.8%，符合《全血及成分血质量要求（GB18469-2012）》，但也发现储存期末溶血率C组与A﹑B两组比较差异都具有统计学意义（P
本结果也显示，三种不同血液制品储存期末溶血率A、B两组比较差异无统计学意义，提示虽然过滤前混匀及过滤使部分红细胞的稳定性和变形能力降低，增加了储存期末溶血的风险，但在一定程度上弥补了白细胞在保存期间破损导致的红细胞溶血，因为未过滤血液中存在的白细胞可能导致增加保存期间的溶血，由于在保存期间，白细胞破损并释放出一些化学物质和酶如过氧化氢和蛋白酶等，已有报道指出，保存期白细胞释放的蛋白酶可造成红细胞溶血，破坏红细胞的代谢和活性。
本研究对三种不同血液制品储存期末溶血率进行分析，其检测样本均符合《全血及成分血质量要求（GB18469-2012）》，但由于样本数量有限，不能以偏概全，因为血液离体后虽然有保养液保存，但血液在制备和保存过程中发生了物理和生物化学的变化，细胞膜结构发生一系列变化，红细胞膜的结构及其变形性是影响红细胞变形性能及血液流动，特别是通过微循环的重要因素之一[6]。因此为了提高输血安全，保证血液质量，血液在采集、制备和保存过程中必须注意以下几个问题：①全血必须完全抗凝，避免采血量不足或过多，未经充分抗凝的血袋中有可见凝块，切勿使用。②严格按按厂家说明使用白细胞滤器，成分制备人员必须经过必要的培训，并定期检测以保证设备使用按厂家说明进行。③保存超过1d的全血，在制备过程中必须特别小心，避免将装有血液的血袋反复振摇﹑挤压，白细胞过滤前可以用2次颠倒血袋方法来进行血液混匀，滤器的初始化应采用自然重力，避免将血液强行通过滤器，过滤过程中避免气泡进入过滤系统。④全血制备去白细胞悬浮红细胞过程中应避免高速离心，防止红细胞过度压缩，红细胞用保养液悬浮时要小心，避免红细胞被破坏。⑤全血或去白细胞悬浮红细胞必须在合适的容器中运输，此容器必须保持血液制品在规定的温度内，不要将血液储存在冷库的通风口，此处温度有可能低于规定的2～6℃。
参考文献
[1]NightingaleMJ，NorfolkDR，PinchonDJ.Currentusesoftransfusionsets：acauseforconcern.TransfusMed，2010，20：291-302.
[2]陈冬梅，任芙蓉，龚晓燕，等.全血、悬浮红细胞和去白细胞悬浮红细胞储存期末溶血率调查.北京医学，2012，34（8）：773-775.
[3]王云英，李兴录，张莉萍，等.血液经白细胞过滤后红细胞膜的损伤.重庆医科大学学报，2008，33（2）：210-212.
[4]陆瑶，张嘉卿，周晨，等.白细胞滤除、离心对红细胞的损伤分析.临床输血与检验，2006，23（4）：212-213.
白细胞范文3
1、白细胞减少症是由于原因不明和继发于其他疾病之后而引起的疾病，分为原发性和继发性两大类，一般原发性原因不明，是继发性者认为其病因可由急性感染，物理化学因素，血液系统疾病等。
2、一般白细胞减少应该及时检查原因，再根据自己的具体情况进行治疗，平时一定要注意自己身体的抵抗力提升，避免免疫力下降引起白细胞减少的现象，也避免长期服用药物。在平时饮食上可以多吃一些易于消化和吸收的食物，注意增强自己的体质，养成良好的生活习惯。
（来源：文章屋网 ）
白细胞范文4
幼儿白细胞计数的正常值是5-12，如果有发烧，且白细胞数下降的话，这个要考虑是病毒性的感染所致。
白细胞是人体与疾病斗争的"卫士"。当病菌侵入人体体内时，白细胞能通过变形而穿过毛细血管壁，集中到病菌入侵部位，将病菌包围﹑吞噬。如果体内的白细胞的数量高于正常值，很可能是身体有了炎症。
（来源：文章屋网 ）
白细胞范文5
关键词：红细胞 白细胞 显微镜检查
Doi：10.3969/j.issn.1671-8801.2014.03.547
【中图分类号】R9 【文献标识码】B 【文章编号】1671-8801（2014）03-0353-01
尿液检查是诊断肾脏疾病和泌尿道疾病的重要方法。随着医学技术的发展，尿干化学法因其灵敏度高、快捷、标本用量少、重复性好等优点，已逐步在基层医院普及。但是尿干化学法还不能完全替代显微镜检查。在一些情况下，如管型、红细胞、白细胞等可能导致假阳性或假阴性。这两种方法均为临床上常用的检测方法，各有其优点及不足。本文分别用干化学法显微镜检法对180例尿样进行检测，以探讨尿液检验中显微镜检查尿液红细胞、白细胞的重要性。
1 材料与方法
1.1 样本来源。取自住院患者晨尿中段尿液样本160份，进行尿干化学分析和显微镜检。
1.2 检测仪器。采用优利特-500B尿液干化学分析仪和配套尿11项试纸；Olympus光学显微镜。
1.3 检测方法。按照《全国临床检验操作规程》第三版进行操作，用一次尿杯留取晨尿约30mL，取10mL置于特制的塑料离心管中，将试纸条浸入2s后取出，放于分析仪上作干化学检测。完毕后将尿液于1500r/min离心5min，弃去上清，剩余0.2mL左右，混匀，先用低倍镜观察全片，再以高倍镜仔细观察，并计数每个视野内红细胞、白细胞的数目，记录方式为：×个细胞/HP，×个管型/LP。
1.4 参考范围及结果判定。连续镜检10个视野：WBC：0～5个/HP，RBC：0～3个/HP，超出此范围则判定为阳性。假阴性：干化学法正常，镜检异常。假阳性：干化学异常，镜检正常。
1.5 统计学方法。采用SPSS16.0软件包进行统计学分析。组间的阳性率比较采用X2检验，以P
2 结果分析
对180例尿液样本进行干化学法和显微镜法检验分析。干化学法RBC阳性94例，占58.75%，显微镜法阳性63例，占39.38%，差异具有统计学意义（X2=2.532，P
3 讨论
3.1 目前，干化学法尿液分析仪以其方法简捷、检测快速、灵敏度高、重复性较好，一般可检测10项及以上等优点而被广泛地应用。但由于干化学分析仪原理是试剂带垫呈色反应与光、电学相结合而检测红细胞和白细胞，从而对有形成分的检测具有一定局限性。由于尿液成分复杂，干化学项目繁多，其检测原理各不相同，所以影响因素很多，易出现假阴性和假阳性结果；而尿沉渣镜检虽操作繁琐，但标准化的显微镜检查仍是尿沉渣分析的“金标准”，其通过显微镜的放大作用，直接将红细胞、白细胞等有形成分直观、真实地呈现于镜下。
3.2 干化学法检测红细胞原理：血红蛋白类过氧化物作用催化分解过氧化物，释放出氧使邻联甲苯胺氧化而呈色。其色泽的深浅与尿中的血红蛋白或红细胞量呈正比。多数情况下可以真实反映尿中红细胞的情况，但某些情况下与镜检结果不一致。尿路感染而出现的分泌物和某些氧化物的污染如次氯酸盐可引起干化学法假阳性，一些疾患如肾病引起尿中红细胞破坏、溶血性疾病导致血红蛋白尿等都能产生假阳性。尿液pH值低、比重低、放置时间长，尿中红细胞就会开始溶解，也会导致假阳性结果产生。维生素C具有还原性，可竞争性抑制反应，若尿中含有大量的维生素C，可使干化学法检测红细胞呈现假阴性。
3.3 对于白细胞的检测而言，干化学法的检测原理是基于中性粒细胞胞质内含有特异性酯酶，而这种酯酶在红细胞、淋巴细胞、单核细胞、血小板、血清、肾脏及尿液中均不存在，试纸反应基质是吲哚酚羟基酸酯，在酯酶作用下将其转变为吲哚酚，再经氧化而产生靛蓝，以其颜色深浅换算成白细胞数。但这只能检测胞质内含酯酶的粒细胞，而不与淋巴细胞和单核细胞反应。因此，当尿液中只有淋巴细胞或单核细胞时，对淋巴细胞和单核细胞会漏诊，从而产生假阴性结果。
本文研究结果显示，干化学法尿液白细胞阳性率为23.15%，低于显微镜检尿液白细胞的35.62%，差异具有统计学意义（X2=3.218，P
3.4 要加强尿常规检测的规范化和标准化，必须把干化学法和尿沉渣镜检结合起来，相互补充，如果两种方法结果明显不符，必须结合临床综合分析，只有这样才能提高尿液检测的准确性，为临床提供准确的诊断和治疗依据。通过本研究证实，两种操作方法有各自的优缺点，只有将两种方法有机结合，综合分析，才能提高尿液检测的准确性和可靠性，为临床提供准确的参考、诊断和治疗依据。
4 结语
尿液红细胞、白细胞的检查对肾疾病的检测有重要意义，是泌尿系统疾病必不可少的诊断手段之一。目前，无论多么先进的尿分析仪，都无法完全取代尿液的显微镜检查，而只能起到筛出的作用。中华医学会多次专家研讨之后也指出：在化学试剂带的质量合格和尿液分析仪运转正常的情况下，实验结果中红细胞、白细胞、蛋白和亚硝酸盐中若有一项结果为阳性，就必须同时进行显微镜检查。这表明了显微镜检查是尿常规检查中不可或缺的，也无法替代。只有结合显微镜检查，才能提高尿液检查的准确度和灵敏度，从而为临床诊断及治疗提供准确的依据。
参考文献
[1] 丛玉隆，王淑娟.今日临床检验学[M].北京：中国科技出版社，1997：236-239
白细胞范文6
妊娠合并哮喘是妊娠合并症中最常见的一种，其发生率为3%～8．4%，且在世界各地呈上升趋势［1］。哮喘喘息发作特别是重症哮喘和哮喘持续状态，可对胎儿和孕妇造成不良影响，评价哮喘妇女与非哮喘妇女妊娠结局的对照研究显示，妊娠期哮喘妇女发生子痫前期、低出生体重儿和早产的危险性增加，围生期死亡率较非哮喘女性高出2倍［2］。研究认为，妊娠可能激活易感女性体内与哮喘相关的炎症途径，导致并加重孕产妇哮喘的严重程度［3］。CD4+T细胞是效应T细胞的重要成分，其中Th17是特异性产生IL-17的T细胞亚型，被认为是介导炎症反应的重要细胞［4］。研究者们发现，Th17细胞与Treg细胞相互抑制，分化发育以及功能的发挥、改变，都可能与哮喘发病有关，提示Th17/Treg细胞的稳态对维持正常免疫应答具有重要意义，但迄今为止该平衡状态与妊娠期哮喘病程变化的机制尚不明确［5］。本研究拟通过观察妊娠期哮喘小鼠模型T细胞亚群Th17及Treg细胞的变化情况，为进一步阐明Th17/Treg细胞免疫平衡在妊娠期哮喘发病机制中的调节作用提供理论和实验依据。
1材料和方法
1．1材料清洁级健康雌性BALB/c小鼠24只(第四军医大学实验动物中心)，6～8周龄，体质量(20±2)g;鸡卵清白蛋白(ovalbumin，OVA，GradeⅤ，纯度＞98%)、氢氧化铝［Al(OH)3］、佛波酯、离子霉素、蛋白转运抑制剂-BFA(美国Sig-ma);乙酰胆碱(methacholine，Mch，上海三爱思);电动雾化吸入器(英国葛兰素史克);FIX＆Perm试剂盒(固定/破膜剂，美国CALTAGLaboratories);荧光素标记抗小鼠mAb:异硫氰基(FITC)-anti-CD4、藻红蛋白(PE)-anti-CD25、PE-anti-IL-17、别藻蓝蛋白(APC)-anti-Foxp3、PE-anti-干扰素γ(IFN-γ)及同型对照(美国BD/Pharmingen);气道阻力与肺顺应性检测系统(FinePointeRCsystem，美国BUXCO);流式细胞仪(FACSCaibur型，美国BectonDickinson)。
1．2方法
1．2．1实验分组和模型构建模型构建根据实验要求参照文献［6］方法并加以改进。按照模型构建策略及干预措施的不同，将BALB/c小鼠随机分为:妊娠期哮喘组(AP组)、非妊娠期哮喘组(ANP组)、健康妊娠组(HP组)及健康非妊娠组(HNP组)，每组各6只。于实验流程的0天(实验当天)和7、14天时，分别给予AP组、ANP组腹腔注射含OVA/Al(OH)3的混悬液0．2ml［OVA100μg，Al(OH)340mg］致敏;给予HP组、HNP组腹腔注射只含5mgAl(OH)3/生理盐水(normalsaline，NS)的混悬液0．2ml致敏。之后，AP组、HP组按2∶1的比例雌雄合笼至妊娠成功。于实验流程的21天起，连续7天，每日将4组小鼠分别放至透明雾化箱内，AP组、ANP组以10g/LOVA/Al(OH)3雾化吸入，1次/d，40min/次进行激发;HP组、HNP组仍以等量Al(OH)3/NS雾化吸入，1次/d，40min/次进行激发以加强致敏。
1．2．2过敏反应评估依据文献［7］的方法和观察指标，监测并记录各组小鼠致敏雾化激发40min后的临床症状及生物学反应。
1．2．3肺功能检测各组小鼠于末次激发24h后开始检测，首先记录小鼠气道阻力基础值。用NS雾化1min，然后再测定小鼠经0，10，20，30，40和50g/LMch雾化激发后的呼吸间歇(enhancedpause，Penh)值，每个浓度每次雾化1min，记录3min。气道反应性指标评定均以小鼠在NS激发后增强的Penh值为基线值，以Mch相应浓度激发下的Penh值与基线值的百分比来反映。Penh值(%)=(检测Penh值－基础Penh值)/基础Penh值×100%。
1．2．4标本采集与处理小鼠肺功能检测后，摘眼球放血并收集血清，－80℃冻存备用。颈椎脱臼处死，立即行颈前暴露，分离气管并插入静脉留置针，缓慢注入1mlPBS灌洗双肺，见肺膨胀后反复抽吸3次，将回收的支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolarlavagefluid，BALF)注入离心管中计量(回收率＞80%为合格)，4℃、1500r/min离心10min后收集上清，－80℃保存待测。吸取BALF中的细胞沉淀用NS重悬制备涂片，固定后行HE染色，连续计数400个细胞，计算细胞总数及嗜酸性粒细胞(eosinophils，Eos)、巨噬细胞(macropha-ges，Mac)、中性粒细胞(neutrophils，Neu)、淋巴细胞(lympho-cytes，Lym)所占百分比。BALF收集完毕后切取小鼠部分左肺组织备用。
1．2．5病理学观察取各组小鼠部分左肺组织，40g/L多聚甲醛中固定24h，脱水、石蜡包埋、切片(4～6μm)行HE染色，光镜下观察气道及肺组织炎性细胞浸润等病理改变。
1．2．6流式细胞术检测取肝素抗凝小鼠外周血100μl用RPMI1640等体积稀释，调细胞密度1×105/L接种至6孔培养板，加入佛波酯50μg/ml和离子霉素1μg/ml共同刺激，再加入蛋白转运抑制剂-BFA2μg/ml混均，37℃50ml/LCO2培养4～6h后收获细胞。按抗体说明，测定管分别加FITC-anti-CD4、PE-anti-IL-17各20μl混匀，多聚甲醛固定20min，离心去上清，10g/L皂甙破膜10min;再加FITC-anti-CD4，PE-anti-CD25及APC-anti-Foxp3各0．2μl，对照管加入相应的同型对照，4℃避光孵育30min，10g/L皂甙缓冲液洗涤1次后，离心去上清，最后以PBS/多聚甲醛重悬细胞。FlowJoV7．3软件分析Th17和Treg细胞所占CD4+T细胞比率变化。
1．2．7RT-PCR检测严格按Trizol试剂说明提取小鼠肺组织细胞总RNA，紫外光法定量检测A260/A280值，并计算RNA浓度，使用荧光定量逆转录试剂盒转录为cDNA，并以此为模板行PCR扩增。反应体系为50μl，上下游引物序列及条件见表1。反应条件:94℃预变性3min;94℃变性30s、58℃退火30s、72℃延伸1min，共30个循环;终末延伸72℃5min。以同时扩增的GAPDH为内参照，退火温度56℃。PCR产物用12g/L琼脂糖凝胶电泳检测45min，每组实验重复6次，采用Gel-pro软件分析RT-PCR条带平均灰度值并拍照，计算目的基因/GAPDH灰度比值，比较各样本相对吸光度值并进行半定量分析。
1．3统计学处理用SPSS13．0软件统计分析数据。计量资料以x珋±s表示，多个样本组间比较采用单因素方差分析，两组间样本均数比较采用LSD检验。P＜0．05为差异有统计学意义。
2结果
2．1雾化激发后行为变化经致敏并激发后，HNP组无明显过敏性反应;HP组多数未见明显异常，仅个别小鼠偶见头面部搔痒、烦躁不安等轻微反应。AP组和ANP组过敏性反应较重，于激发10min开始即出现搔抓头、鼻、面部及躯干，明显烦躁不安，随着刺激时间的延长，呼吸加深、加快，表现为少动，前肢缩抬，腹肌抽搐，大、小便失禁，眼及口周组织浮肿，严重者对外界反应迟钝，呼吸减慢或节律不规则，四肢瘫软甚至瘫痪。
2．2气道反应性表现末次激发24h后，各组小鼠基础肺阻力无显著差异，随着Mch给药浓度逐渐增加，各组小鼠Penh值均出现随Mch浓度升高而气道反应性增强趋势。Mch以0，10g/L激发时，各组组间Penh值差异不明显。AP组从Mch30g/L开始，ANP组从Mch20g/L开始Penh值即明显高于HP和HNP组(P＜0．01)。尤其当Mch浓度达到40或50g/L时，ANP组小鼠气道反应性最高，表现出敏感且过强的支气管平滑肌收缩反应，Penh值也高于AP组(P＜0．05)。见图1。
2．3BALF中细胞计数和分类比较与HP组、HNP组相比较，AP组、ANP组BALF中Mac百分率均显著降低(P＜0．05);白细胞总数明显升高，Neu、Eos和Lym增加，其中尤以Eos百分率增高显著(P＜0．01)。AP组与ANP组，HNP组与HP组组间比较，差异均无统计学意义。见表2，图2。
2．4肺及气道组织病理形态学变化光镜下观察可见，AP组病变严重、广泛，细支气管黏膜及下层伴行血管周围有大量炎性细胞浸润，以Eos浸润为主，支气管管腔内可见黏液栓堵塞，纤毛排列紊乱，上皮下基底层明显增厚，上皮细胞、平滑肌细胞肥大增生，气道上皮细胞坏死、脱落，肺泡间隔不同程度增宽，部分断裂，形成肺气肿(图3A);ANP组也存在类似变化(图3B);HP组仅呈现很轻微的形态学改变，部分支气管黏膜轻度水肿，偶见炎性细胞浸润，支气管内皱褶减少及少许上皮脱落(图3C);HNP组结构清晰、形态规则，基本无炎性细胞浸润(图3D)。
2．5肺组织中相关细胞因子mRNA表达所检测小鼠肺组织中各细胞因子mRNA表达结果显示，AP组IL-17、IL-23、IL-10均显著高于HP组、HNP组(P＜0．01);IFN-γ均显著低于HP组、HNP组(P＜0．01);ANP组肺组织各因子表达变化趋势与AP组基本相同，组间无显著差异。见表3，图4。
2．6Th17及Treg细胞比率变化小鼠外周血中Th17及Treg细胞所占CD4+T细胞比率结果显示，与HP组、HNP组相比较，AP组CD4+IL-17+T细胞(Th17)比值显著升高(P＜0．01);而Foxp3+T细胞(Treg)比值显著降低(P＜0．01);CD4+IL-17+/Foxp3+T细胞比值显著升高(P＜0．01)，提示存在Th17/Treg比例失衡。ANP组Th17及Treg细胞比例与AP组无显著差异。见图5。
2．7相关性分析与气道炎性指标相关分析表明，AP组小鼠肺组织中IL-17mRNA表达水平与BALF中的Neu、Eos绝对值呈显著正相关(r=0．756，P＜0．05;r=0．819，P＜0．01)。